| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第13-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-23页 |
| 第二章 MTN@DTX-CD的制剂学研究 | 第23-53页 |
| 1 仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 1.1 试剂 | 第23页 |
| 1.2 仪器 | 第23-24页 |
| 2 实验内容 | 第24-32页 |
| 2.1 DTX含量测定方法的建立 | 第24-25页 |
| 2.1.1 DTX的检测波长的确定 | 第24页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第24-25页 |
| 2.1.3 DTX标准曲线的建立 | 第25页 |
| 2.1.4 准确度研究 | 第25页 |
| 2.1.5 精密度研究 | 第25页 |
| 2.2 MTN-AD的制备 | 第25-27页 |
| 2.2.1 MTN的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.2 MTN的氨基化修饰 | 第26页 |
| 2.2.3 活性氧敏感键（COOH-S-C(CH_3)_2-S-COOH）的合成 | 第26页 |
| 2.2.4 MTN-S-C(CH_3)_2-S-COOH的制备 | 第26页 |
| 2.2.5 MTN-S-C(CH_3)_2-S-AD（即MTN-AD）的制备 | 第26-27页 |
| 2.3 MTN@DTX-CD的制备 | 第27页 |
| 2.4 MTN@DTX-CD最佳制备条件的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.1 投料比的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.2 超声时间的确定 | 第28页 |
| 2.4.3 超声功率的确定 | 第28页 |
| 2.5 MTN@DTX-CD载药率的测定 | 第28页 |
| 2.6 COOH-S-C(CH_3)_2-S-COOH的核磁氢谱 | 第28-29页 |
| 2.7 全波长扫描图 | 第29页 |
| 2.8 傅立叶红外光谱（FT-IR） | 第29页 |
| 2.9 热重分析（TGA） | 第29页 |
| 2.10 透射电子显微镜（TEM） | 第29页 |
| 2.11 粒径分布以及Zeta电位的考察 | 第29-30页 |
| 2.12 MTN-AD比表面积和孔道尺寸的考察 | 第30页 |
| 2.13 MTN-AD聚焦超声下活性氧产生实验 | 第30页 |
| 2.13.1 活性氧产生与MTN-AD浓度的关系 | 第30页 |
| 2.13.2 活性氧产生与超声功率的关系 | 第30页 |
| 2.14 MTN@DTX-CD的体外药物释放实验 | 第30-31页 |
| 2.15 MTN、MTN-AD和MTN@DTX-CD的稳定性考察 | 第31页 |
| 2.16 统计学分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与讨论 | 第32-52页 |
| 3.1 DTX含量测定 | 第32-34页 |
| 3.1.1 DTX检测波长 | 第32页 |
| 3.1.2 DTX标准曲线 | 第32-34页 |
| 3.1.3 准确度 | 第34页 |
| 3.1.4 精密度 | 第34页 |
| 3.2 MTN@DTX-CD的制备 | 第34-38页 |
| 3.2.1 投料比 | 第35-36页 |
| 3.2.2 超声时间 | 第36-37页 |
| 3.2.3 超声功率 | 第37-38页 |
| 3.3 COOH-S-C(CH_3)_2-S-COOH的核磁氢谱 | 第38页 |
| 3.4 全波长扫描图谱 | 第38-39页 |
| 3.5 傅立叶红外光谱 | 第39-41页 |
| 3.6 热重分析 | 第41-42页 |
| 3.7 TEM | 第42-43页 |
| 3.8 粒径分布和Zeta电位 | 第43-44页 |
| 3.9 MTN-AD的比表面积和孔道尺寸 | 第44-46页 |
| 3.10 MTN-AD聚焦超声下活性氧产生 | 第46-48页 |
| 3.11 MTN@DTX-CD体外药物释放实验 | 第48-50页 |
| 3.12 MTN@DTX-CD稳定性 | 第50-52页 |
| 4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第三章 MTN@DTX-CD的体外抗肿瘤活性研究 | 第53-69页 |
| 1 仪器与试剂 | 第53-55页 |
| 1.1 试剂 | 第53页 |
| 1.2 仪器 | 第53-54页 |
| 1.3 主要试剂的配制方法 | 第54-55页 |
| 2 实验内容 | 第55-60页 |
| 2.1 细胞培养 | 第55页 |
| 2.2 聚焦超声MCF-7 细胞内控释药物实验 | 第55-56页 |
| 2.2.1 MTN@FITC-CD的制备 | 第56页 |
| 2.2.2 聚焦超声控释药物实验 | 第56页 |
| 2.3 细胞内活性氧实验 | 第56-58页 |
| 2.3.1 DCFH-DA探针检测细胞内活性氧实验 | 第57页 |
| 2.3.2 线粒体膜电位的测定 | 第57页 |
| 2.3.3 彗星实验 | 第57-58页 |
| 2.4 细胞毒性实验 | 第58-59页 |
| 2.4.1 SRB检测方法 | 第58-59页 |
| 2.4.2 SRB法研究MTN、MTN-AD对MCF-7 细胞的毒性实验 | 第59页 |
| 2.4.3 SRB法研究MTN@DTX-CD对MCF-7 细胞存活率的影响 | 第59页 |
| 2.5 细胞凋亡实验 | 第59-60页 |
| 3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 3.1 聚焦超声MCF-7 细胞内控释DTX实验 | 第60-61页 |
| 3.2 细胞内活性氧实验 | 第61-64页 |
| 3.2.1 细胞内活性氧检测 | 第61-62页 |
| 3.2.2 线粒体膜电位 | 第62-63页 |
| 3.2.3 彗星实验 | 第63-64页 |
| 3.3 细胞毒性实验 | 第64-67页 |
| 3.3.1 SRB法研究MTN、MTN-AD对MCF-7 细胞的毒性 | 第64-65页 |
| 3.3.2 SRB法研究MTN@DTX-CD对MCF-7 细胞存活率的影响 | 第65-67页 |
| 3.4 细胞凋亡实验 | 第67页 |
| 4 本章小结 | 第67-69页 |
| 第四章 MTN@DTX-CD的体内抗肿瘤活性研究 | 第69-89页 |
| 1 仪器与试剂 | 第69-70页 |
| 1.1 试剂 | 第69页 |
| 1.2 仪器 | 第69页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第69-70页 |
| 2 实验内容 | 第70-77页 |
| 2.1 MTN@DTX-CD在荷瘤小鼠体内的组织分布学研究 | 第70-74页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第70-71页 |
| 2.1.2 S180荷瘤小鼠模型的构建 | 第71页 |
| 2.1.3 MTN@DTX-CD-IR783的制备 | 第71页 |
| 2.1.4 MTN@DTX-CD在各组织中的分布 | 第71-72页 |
| 2.1.5 MTN@FITC-AD的制备 | 第72页 |
| 2.1.6 聚焦超声体内控释药物实验 | 第72页 |
| 2.1.7 色谱条件 | 第72页 |
| 2.1.8 瘤组织样品处理 | 第72-73页 |
| 2.1.9 专属性考察 | 第73页 |
| 2.1.10 组织样品DTX标准曲线的构建 | 第73页 |
| 2.1.11 精密度实验 | 第73页 |
| 2.1.12 回收率实验 | 第73-74页 |
| 2.1.13 肿瘤组织中控释DTX实验 | 第74页 |
| 2.2 体内抗肿瘤活性研究 | 第74-77页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第74页 |
| 2.2.2 S180荷瘤小鼠模型的构建 | 第74-75页 |
| 2.2.3 实验分组以及数据测定 | 第75-76页 |
| 2.2.4 苏木精伊红（HE）染色考察病理变化 | 第76页 |
| 2.2.5 对生化指标的影响 | 第76-77页 |
| 3 结果与讨论 | 第77-87页 |
| 3.1 MTN@DTX-CD在S180荷瘤小鼠体内的组织分布学研究 | 第77-82页 |
| 3.1.1 MTN@DTX-CD在各组织中的分布 | 第77-78页 |
| 3.1.2 体内聚焦超声控释药物 | 第78-79页 |
| 3.1.3 专属性 | 第79-80页 |
| 3.1.4 标准曲线 | 第80-81页 |
| 3.1.5 精密度和回收率 | 第81页 |
| 3.1.6 肿瘤组织中控释DTX | 第81-82页 |
| 3.2 体内抗肿瘤活性 | 第82-87页 |
| 3.2.1 荷瘤小鼠肿瘤体积和体重的变化 | 第82-85页 |
| 3.2.2 HE染色 | 第85-87页 |
| 3.2.3 生化指标 | 第87页 |
| 4 本章小结 | 第87-89页 |
| 第五章 总结 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-98页 |
| 个人简介 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99页 |
