| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 沼泽绿牛蛙生物学概况及两栖类动物皮肤结构 | 第10-13页 |
| 1.1.1 沼泽绿牛蛙生物学概况 | 第10页 |
| 1.1.2 两栖类动物皮肤结构及活性物质 | 第10-13页 |
| 1.1.2.1 两栖类动物皮肤结构 | 第10-12页 |
| 1.1.2.2 两栖类动物皮肤活性物质 | 第12-13页 |
| 1.2 两栖类动物抗菌肽概述 | 第13-18页 |
| 1.2.1 两栖类动物抗菌肽种类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 两栖类动物抗菌肽的理化特性 | 第14页 |
| 1.2.3 两栖类动物抗菌肽的生物活性 | 第14-15页 |
| 1.2.4 抗菌肽作用机制 | 第15-18页 |
| 1.2.4.1 抗菌肽对细菌的作用机制 | 第15-17页 |
| 1.2.4.2 抗菌肽对真菌的作用机制 | 第17页 |
| 1.2.4.3 抗菌肽对病毒的作用机制 | 第17页 |
| 1.2.4.4 抗菌肽对肿瘤细胞、原虫的作用机制 | 第17-18页 |
| 1.3 两栖类皮肤活性抗菌肽的研究现状 | 第18-20页 |
| 1.3.1 国外研究现状 | 第18-19页 |
| 1.3.2 国内研究现状 | 第19-20页 |
| 1.4 抗菌肽的应用前景 | 第20-23页 |
| 1.4.1 用于开发新型抗菌、抗病毒、抗肿瘤药物 | 第20-21页 |
| 1.4.2 应用在转基因工程中 | 第21-22页 |
| 1.4.3 应用于新型绿色饲料添加剂中 | 第22-23页 |
| 1.5 立题依据 | 第23-24页 |
| 第2章 不同诱导方式得到沼泽绿牛蛙产物的抗菌活性比较 | 第24-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.2 实验设备 | 第25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 样品收集 | 第25-27页 |
| 2.3.1.1 蛙皮分泌液的收集 | 第25-26页 |
| 2.3.1.2 蛙皮粗提取液的收集 | 第26页 |
| 2.3.1.3 蛙血清中抗菌物质的诱导与收集 | 第26-27页 |
| 2.3.2 检测抑菌活性 | 第27页 |
| 2.4 结果 | 第27-29页 |
| 2.5 讨论 | 第29-33页 |
| 2.5.1 不同诱导方式的选择依据 | 第29-30页 |
| 2.5.2 不同诱导方式的抑菌结果 | 第30-33页 |
| 2.5.2.1 四种样品对细菌抑菌结果 | 第30-31页 |
| 2.5.2.2 四种样品对酵母菌抑菌结果 | 第31页 |
| 2.5.2.3 四种样品抑菌结果的比较 | 第31-33页 |
| 第3章 蛙皮分泌液的分离纯化 | 第33-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2 实验设备 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.3.1 凝胶过滤层析分离 | 第35-36页 |
| 3.3.1.1 Sephadex G-50凝胶过滤 | 第35-36页 |
| 3.3.1.2 抑菌活性测定 | 第36页 |
| 3.3.1.3 凝胶过滤层析脱盐 | 第36页 |
| 3.3.2 制备型反相高效液相色谱(RP-HPLC)分离 | 第36页 |
| 3.3.3 各峰收集液抑菌实验 | 第36-37页 |
| 3.3.4 纯度鉴定 | 第37-38页 |
| 3.3.4.1 分析型反相高效液相色谱(RP-HPLC)检测 | 第37页 |
| 3.3.4.2 组分分析 | 第37页 |
| 3.3.4.3 Tricine-SDS-PAGE检测 | 第37-38页 |
| 3.4 结果与分析 | 第38-42页 |
| 3.4.1 凝胶层析分离 | 第38页 |
| 3.4.2 抑菌活性测定 | 第38-39页 |
| 3.4.3 制备型反相高效液相色谱(RP-HPLC)分离 | 第39-40页 |
| 3.4.4 分离后各峰收集液的抑菌作用 | 第40页 |
| 3.4.5 纯度测定 | 第40-42页 |
| 3.4.5.1 分析型反相高效液相色谱(RP-HPLC)检测 | 第40-41页 |
| 3.4.5.2 组分分析 | 第41-42页 |
| 3.4.5.3 Tricine-SDS-PAGE检测 | 第42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-46页 |
| 3.5.1 凝胶过滤层析分离参数分析 | 第43页 |
| 3.5.2 反相高效液相色谱(RP-HPLC)分离分析 | 第43-44页 |
| 3.5.3 纯度鉴定 | 第44-46页 |
| 第4章 测序分析与性质表征 | 第46-56页 |
| 4.1 实验材料及设备 | 第46-48页 |
| 4.2.1 测序 | 第46-47页 |
| 4.2.2 序列与结构分析 | 第47页 |
| 4.2.3 抗菌肽GUE Ⅰ对七种菌的最低抑制浓度(MIC)测定 | 第47页 |
| 4.2.4 温度和时间对抗菌活性的影响 | 第47页 |
| 4.2.5 胰蛋白酶对抗菌活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.6 溶血及血液凝固活性测定 | 第48页 |
| 4.3 结果 | 第48-52页 |
| 4.3.1 抗菌肽GUE Ⅰ测序结果 | 第48页 |
| 4.3.2 序列与结构分析 | 第48-50页 |
| 4.3.3 抗菌肽GUE Ⅰ对七种菌的最低抑制浓度(MIC) | 第50-51页 |
| 4.3.4 温度和时间对抗菌活性的影响 | 第51页 |
| 4.3.5 胰蛋白酶对抗菌活性的影响 | 第51页 |
| 4.3.6 溶血及血液凝固活性测定 | 第51-52页 |
| 4.4 讨论 | 第52-56页 |
| 4.4.1 抗菌肽GUE Ⅰ的序列与结构分析 | 第52页 |
| 4.4.2 抗菌肽GUE Ⅰ对七种菌的MIC | 第52-53页 |
| 4.4.3 抗菌肽与抗生素作用机制的比较 | 第53-54页 |
| 4.4.4 理化因子对抗菌活性成分的影响 | 第54页 |
| 4.4.5 溶血活性 | 第54-56页 |
| 第5章 结论 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第65页 |
