| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写词表 | 第9-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 沙门氏菌的生物学性状 | 第12-13页 |
| 1.2 沙门氏菌的致病性和免疫性 | 第13页 |
| 1.2.1 致病性 | 第13页 |
| 1.2.2 免疫性 | 第13页 |
| 1.3 沙门氏菌病的流行病学 | 第13-15页 |
| 1.3.1 沙门氏菌病流行情况 | 第13-15页 |
| 1.3.2 鸭沙门氏菌病流行状况 | 第15页 |
| 1.4 鸭沙门氏菌病的临床症状 | 第15-16页 |
| 1.5 鸭沙门氏菌病理变化 | 第16页 |
| 1.6 鸭沙门氏菌病临床诊断方法 | 第16-18页 |
| 1.6.1 常规检测方法 | 第16-17页 |
| 1.6.2 分子生物检测方法 | 第17页 |
| 1.6.3 免疫学检测方法 | 第17-18页 |
| 1.7 ELISA方法的应用与优越性 | 第18-20页 |
| 1.7.1 ELISA方法的各种应用 | 第18-19页 |
| 1.7.2 间接夹心ELISA在检测动物疾病中的应用 | 第19-20页 |
| 1.8 本研究的目的和意义 | 第20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-27页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 供试菌株、毒株 | 第20页 |
| 2.1.2 试验动物 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 鸭沙门氏菌抗原的制备 | 第21-22页 |
| 2.2.2 鸭抗沙门氏菌高免血清的制备 | 第22页 |
| 2.2.3 兔抗沙门氏菌高免血清的制备 | 第22页 |
| 2.2.4 鸭抗沙门氏菌IgG、兔抗沙门氏菌IgG提纯 | 第22-23页 |
| 2.2.5 间接夹心ELISA检测鸭沙门氏菌操作流程 | 第23-24页 |
| 2.2.6 间接夹心ELISA技术参数筛选 | 第24-25页 |
| 2.2.7 阴阳性临界点的确定 | 第25-26页 |
| 2.2.8 重复性试验 | 第26页 |
| 2.2.9 特异性试验 | 第26页 |
| 2.2.10 敏感性试验 | 第26页 |
| 2.2.11 间接夹心ELISA检测鸭沙门氏菌的应用 | 第26-27页 |
| 2.2.12 保存期实验 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-38页 |
| 3.1 抗原的制备 | 第27页 |
| 3.2 鸭抗沙门氏菌IgG、兔抗沙门氏菌1gG的提取 | 第27页 |
| 3.3 间接夹心ELISA最佳技术条件的确定 | 第27-35页 |
| 3.3.1 鸭抗沙门氏菌IgG与兔抗沙门氏菌IgG最佳工作浓度的确定 | 第27-28页 |
| 3.3.2 酶标羊抗兔IgG最佳稀释度的确定 | 第28-29页 |
| 3.3.3 鸭抗沙门氏菌1gG包被时间及温度的确定 | 第29-30页 |
| 3.3.4 最适封闭液的确定 | 第30-31页 |
| 3.3.5 封闭时间的确定 | 第31-32页 |
| 3.3.6 抗原孵育时间的确定 | 第32-33页 |
| 3.3.7 兔抗沙门氏菌IgG孵育时间的确定 | 第33页 |
| 3.3.8 酶标羊抗兔IgG孵育时间的确定 | 第33-34页 |
| 3.3.9 底物作用时间的确定 | 第34-35页 |
| 3.4 阴阳性临界点的确定 | 第35页 |
| 3.5 重复性试验 | 第35页 |
| 3.6 特异性实验 | 第35-36页 |
| 3.7 敏感性试验 | 第36页 |
| 3.8 人工感染鸭沙门氏菌的检测及各组织中细菌的分布 | 第36-37页 |
| 3.9 保存期试验 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 4.1 鸭抗沙门氏菌IgG、兔抗沙门氏菌IgG的纯化 | 第38页 |
| 4.2 间接夹心ELISA技术参数筛选 | 第38-39页 |
| 4.3 结果判定 | 第39页 |
| 4.4 间接夹心ELISA的特异性和敏感性 | 第39页 |
| 4.5 鸭沙门氏菌在鸭体内各组织的分布状况 | 第39-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 6 参考文献 | 第41-45页 |
| 7 致谢 | 第45页 |
