| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文对照表 | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 Ⅱ型糖尿病视网膜病变 | 第13-19页 |
| 1.1.1 病因 | 第13-14页 |
| 1.1.2 其它相关并发症 | 第14-15页 |
| 1.1.3 发病进展 | 第15-18页 |
| 1.1.4 发病机制 | 第18-19页 |
| 1.2 芪蛭降糖胶囊的研究进展 | 第19-20页 |
| 第二章 体内研究 | 第20-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 实验药品 | 第20页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 动物模型的建立 | 第21页 |
| 2.2.2 动物分组及给药 | 第21页 |
| 2.2.3 大鼠脂质代谢水平测定 | 第21页 |
| 2.2.4 大鼠视网膜 HE 染色 | 第21-22页 |
| 2.2.5 大鼠视网膜免疫组化染色 | 第22-23页 |
| 2.2.6 大鼠血清血管内皮损伤相关蛋白表达水平检测 | 第23页 |
| 2.3 研究结果 | 第23-29页 |
| 2.3.1 芪蛭降糖胶囊对大鼠脂代的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.2 芪蛭降糖胶囊对大鼠视网膜形态影响 | 第24页 |
| 2.3.3 大鼠视网膜免疫组化染色结果 | 第24-27页 |
| 2.3.4 芪蛭降糖胶囊对大鼠血清 VEGF、PGI2 和 vWF 蛋白表达量的影响 | 第27-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 体外研究 | 第31-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第31页 |
| 3.1.2 实验药品 | 第31页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 细胞模型建立 | 第32页 |
| 3.2.2 分组及给药 | 第32-33页 |
| 3.2.3 细胞存活率测定 | 第33页 |
| 3.2.4 细胞内活性氧（ROS）的测定 | 第33页 |
| 3.2.5 血管内皮相关基因 Bcl-2、NOX4、eNOS 和 ET-1 的基因表达量的测定 | 第33-34页 |
| 3.2.6 内皮损伤相关蛋白 NO、NOS、VEGF 和 SOD 的蛋白表达水平测定 | 第34页 |
| 3.3 研究结果 | 第34-40页 |
| 3.3.1 药物最大无毒浓度（TC0）的测定 | 第34-35页 |
| 3.3.2 芪蛭降糖胶囊作用后细胞存活率的测定 | 第35页 |
| 3.3.3 细胞内活性氧（ROS）含量 | 第35-36页 |
| 3.3.4 内皮损伤相关基因 Bcl-2、ET-1、NOX4 及 eNOS 表达量 | 第36-37页 |
| 3.3.5 血管内皮氧化损伤相关蛋白 NO、NOS、SOD 和 VEGF 的表达水平 | 第37-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第四章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
