| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 蜘蛛毒素与电压敏感钠通道研究进展 | 第10-20页 |
| 1.1 蜘蛛毒素研究概况和意义 | 第10-14页 |
| 1.1.1 蜘蛛毒素的组成 | 第10-12页 |
| 1.1.2 蜘蛛多肽毒素的功能 | 第12-13页 |
| 1.1.3 蜘蛛毒素研究内容和意义 | 第13-14页 |
| 1.2 电压门控钠通道研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 钠离子通道的组成和分类 | 第14-16页 |
| 1.2.2 钠通道分布 | 第16页 |
| 1.2.3 钠通道与疾病发生 | 第16-17页 |
| 1.3 蜘蛛毒素与电压门钠通道相互作用研究进展 | 第17-20页 |
| 1.3.1 位点3蜘蛛多肽毒素与钠通道作用分析 | 第17-18页 |
| 1.3.2 位点4蜘蛛多肽毒素与钠通道作用分析 | 第18-20页 |
| 第二章 敬钊缨毛蛛毒素34抑制钠通道亚型Nav1.7的分子机制研究 | 第20-40页 |
| 2.1 前言 | 第20-21页 |
| 2.2 实验材料,试剂和仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 毒素和动物 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂与仪器 | 第21-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-29页 |
| 2.3.1 化学合成成品JZTX-34的质谱鉴定 | 第22-23页 |
| 2.3.2 化学合成成品JZTZ-34与天然毒素共洗脱实验 | 第23页 |
| 2.3.3 钠通道嵌合体和突变体构建 | 第23-24页 |
| 2.3.4 质粒转化与质粒提取 | 第24-26页 |
| 2.3.5 钠离子通道在HEK293T细胞上的表达 | 第26-27页 |
| 2.3.5.1 HEK293T细胞复苏 | 第26页 |
| 2.3.5.2 细胞传代培养 | 第26-27页 |
| 2.3.5.3 HEK293T细胞转染 | 第27页 |
| 2.3.6 急性分离大鼠背根神经节DRG细胞 | 第27-28页 |
| 2.3.7 膜片钳检测毒素活性 | 第28-29页 |
| 2.4 实验结果 | 第29-38页 |
| 2.4.1 化学合成JZTX-34和天然JZTX-34共洗脱托分析 | 第29-30页 |
| 2.4.2 化学合成JZTX-34在DRG细胞上活性分析 | 第30-31页 |
| 2.4.3 JZTX-34对四种钠通道亚型选择性分析 | 第31-32页 |
| 2.4.4 JZTX-34对Nav1.7的动力学影响分析 | 第32-35页 |
| 2.4.6 Nav1.7通道关键氨基酸残基分析 | 第35-38页 |
| 2.5 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 SynaptotagminⅠ钙离子依赖性调控Kv1.4失活 | 第40-50页 |
| 3.1 A型钾离子通道研究进展 | 第40-42页 |
| 3.1.1 A型钾离子通道组成与功能 | 第40-41页 |
| 3.1.2 A型钾通道的N-型失活和C-型失活 | 第41-42页 |
| 3.1.3 A型钾离子通道及其相互作用蛋白 | 第42页 |
| 3.2 前言 | 第42-43页 |
| 3.3 材料,试剂和仪器 | 第43页 |
| 3.3.1 实验材料 | 第43页 |
| 3.3.2 试剂和仪器 | 第43页 |
| 3.4 实验步骤 | 第43-44页 |
| 3.4.1 质粒的提取如 | 第43页 |
| 3.4.2 人胚肾细胞(HEK293T)的培养 | 第43页 |
| 3.4.3 脂质体转染 | 第43-44页 |
| 3.4.4 膜片钳电生理活性实验 | 第44页 |
| 3.5 实验结果 | 第44-49页 |
| 3.5.1 Synaptotagmin Ⅰ延缓Kv1.4通道的失活 | 第44-45页 |
| 3.5.2 钙离子参与synaptotagmin Ⅰ对Kv1.4失活调控 | 第45-46页 |
| 3.5.3 synaptotagmin Ⅰ特异性调控Kv1.4通道 | 第46-49页 |
| 3.6 讨论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 缩写表(中英文对照) | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
