| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 序言 | 第11-16页 |
| 1 红细胞的特性 | 第11页 |
| 2 红细胞作为药物载体的发展进程 | 第11-12页 |
| 3 纳米红细胞膜运载药物及纳米粒 | 第12-13页 |
| 4 丹参酮IIA磺酸钠 | 第13页 |
| 5 氧化应激损伤与丹参酮IIA磺酸钠 | 第13-15页 |
| 6 研究意义 | 第15-16页 |
| 第一章 STS-NANO-RBC分析方法的建立 | 第16-23页 |
| 1 仪器与材料 | 第16页 |
| 2 方法与结果 | 第16-22页 |
| 2.1 HPLC分析方法的建立 | 第16-22页 |
| 2.1.1 紫外吸收特征 | 第16-17页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第17页 |
| 2.1.3 溶液的制备 | 第17-18页 |
| 2.1.4 专属性考察 | 第18-20页 |
| 2.1.5 标准曲线的绘制 | 第20-21页 |
| 2.1.6 精密度考察 | 第21页 |
| 2.1.7 回收率实验 | 第21页 |
| 2.1.8 稳定性试验 | 第21-22页 |
| 3 讨论 | 第22页 |
| 4 小结 | 第22-23页 |
| 第二章 STS-NANO-RBC的制备及特性考察 | 第23-37页 |
| 1 仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 1.1 仪器 | 第23页 |
| 1.2 试剂与材料 | 第23-24页 |
| 2 方法与结果 | 第24-36页 |
| 2.1 STS-Nano-RBC的制备 | 第24-26页 |
| 2.2 STS-Nano-RBC的制备因素考察 | 第26-29页 |
| 2.2.1 渗透压的影响 | 第26-27页 |
| 2.2.2 温度的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.3 STS浓度的影响 | 第28页 |
| 2.2.4 体积比的影响 | 第28-29页 |
| 2.3 STS-Nano-RBC的特性考察 | 第29-31页 |
| 2.3.1 膜蛋白特性 | 第29页 |
| 2.3.2 粒径与电位 | 第29-30页 |
| 2.3.3 STS包封率 | 第30-31页 |
| 2.4 STS-Nano-RBC的稳定性考察 | 第31-34页 |
| 2.4.1 离心稳定性 | 第31-32页 |
| 2.4.2 湍流稳定性 | 第32-33页 |
| 2.4.3 储存稳定性试验 | 第33-34页 |
| 2.5 STS-Nano-RBC的体外释放实验 | 第34-35页 |
| 2.6 溶血实验 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36页 |
| 4 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 STS-NANO-RBC大鼠体内药动学及组织分布研究 | 第37-47页 |
| 1 仪器、试剂与实验动物 | 第37-38页 |
| 1.1 仪器 | 第37-38页 |
| 1.2 试剂与材料 | 第38页 |
| 1.3 实验动物 | 第38页 |
| 2 方法与结果 | 第38-45页 |
| 2.1 HPLC分析方法的建立 | 第38-42页 |
| 2.1.1 溶液的配制 | 第38-39页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第39页 |
| 2.1.3 血浆样品的处理方法 | 第39页 |
| 2.1.4 HPLC方法学考察 | 第39-42页 |
| 2.2 大鼠体内药代动力学研究 | 第42-43页 |
| 2.2.1 给药方案与血浆采集 | 第42页 |
| 2.2.2 STS血药浓度的测定 | 第42-43页 |
| 2.3 STS-Nano-RBC大鼠体内组织分布研究 | 第43-45页 |
| 2.3.1 给药方案及脏器采集 | 第44页 |
| 2.3.2 组织样品的处理 | 第44页 |
| 2.3.3 组织分布结果 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45-46页 |
| 4 小结 | 第46-47页 |
| 第四章 STS-NANO-RBC的细胞摄取研究 | 第47-57页 |
| 1 仪器试剂与细胞 | 第48-49页 |
| 1.1 仪器 | 第48页 |
| 1.2 试剂 | 第48-49页 |
| 1.3 细胞 | 第49页 |
| 2 方法和结果 | 第49-56页 |
| 2.1 荧光显微镜法观察细胞摄取 | 第49-53页 |
| 2.1.1 荧光标记STS-Nano-RBC纳米粒 | 第49-50页 |
| 2.1.2 EA.hy926细胞对STS-Nano-RBC摄取的定性研究 | 第50-51页 |
| 2.1.3 EA.hy926对STS-Nano-RBC摄取的定量研究 | 第51-53页 |
| 2.2 STS-Nano-RBC摄取机制的初步探索 | 第53-56页 |
| 2.2.1 温度的影响 | 第53-54页 |
| 2.2.2 代谢抑制剂的影响 | 第54页 |
| 2.2.3 高渗溶液的影响 | 第54-55页 |
| 2.2.4 氯化铵的影响 | 第55页 |
| 2.2.5 氯丙嗪的影响 | 第55页 |
| 2.2.6 染料木素的影响 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 4 小结 | 第57页 |
| 第五章 STS-NANO-RBC对氧化损伤细胞的保护作用 | 第57-67页 |
| 1 仪器试剂 | 第58-59页 |
| 1.1 仪器 | 第58页 |
| 1.2 试剂 | 第58-59页 |
| 2 方法与结果 | 第59-65页 |
| 2.1 EA.hy926细胞氧化损伤模型的构建 | 第59-60页 |
| 2.2 细胞毒性实验 | 第60-61页 |
| 2.3 STS-Nano-RBC对氧化应激损伤细胞的保护作用 | 第61-64页 |
| 2.3.1 SOD含量的测定 | 第61-62页 |
| 2.3.2 MDA含量测定 | 第62-63页 |
| 2.3.3 NO含量测定 | 第63-64页 |
| 2.4 荧光显微镜法观察细胞内ROS含量的变化 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65-66页 |
| 4 小结 | 第66-67页 |
| 总结与展望 | 第67-69页 |
| 学习期间已发表和待发表的学术论文和专利 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
