摘要 | 第6-7页 |
ABSTRACT | 第7页 |
文献综述 | 第10-20页 |
第一章 黄体研究进展 | 第10-15页 |
1.1 黄体的形成和退化 | 第10-11页 |
1.1.1 黄体的形成 | 第10-11页 |
1.1.2 黄体的退化 | 第11页 |
1.2 黄体的功能 | 第11-13页 |
1.2.1 黄体的分泌功能 | 第12页 |
1.2.2 黄体的调控功能 | 第12-13页 |
1.3 类固醇化合物的合成 | 第13页 |
1.4 弥散性神经内分泌细胞标志物 | 第13-14页 |
1.5 展望 | 第14-15页 |
第二章 VEGF及其受体研究进展 | 第15-20页 |
2.1 VEGF家族及其功能 | 第15-16页 |
2.2 VEGF受体家族及其功能 | 第16-17页 |
2.3 VEGF抑制剂家族及其功能 | 第17-18页 |
2.4 VEGF与黄体功能的关系 | 第18-19页 |
2.5 展望 | 第19-20页 |
试验研究 | 第20-40页 |
第三章 VEGF对永生化山羊黄体细胞增殖的影响 | 第20-31页 |
3.1 材料 | 第20-22页 |
3.1.1 细胞株 | 第20页 |
3.1.2 主要仪器与试剂 | 第20-21页 |
3.1.3 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
3.2 方法 | 第22-24页 |
3.2.1 永生化黄体细胞与永生化内皮细胞的复苏 | 第22页 |
3.2.2 细胞的培养与传代 | 第22页 |
3.2.3 细胞的冻存 | 第22-23页 |
3.2.4 细胞爬片的制作 | 第23页 |
3.2.5 细胞的吉姆萨染色 | 第23页 |
3.2.6 细胞的HE染色 | 第23页 |
3.2.7 MTT(噻唑蓝)法 | 第23-24页 |
3.3 结果 | 第24-29页 |
3.3.1 光学显微镜观察结果 | 第24-25页 |
3.3.2 细胞吉姆萨染色结果 | 第25页 |
3.3.3 细胞HE染色结果 | 第25-26页 |
3.3.4 共培养后细胞增殖情况的变化 | 第26页 |
3.3.5 VEGF对单独培养黄体细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
3.3.6 VEGF对共培养细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
3.3.7 SU1498对共培养细胞增殖的影响 | 第28-29页 |
3.4 讨论 | 第29-30页 |
3.5 小结 | 第30-31页 |
第四章 VEGF对永生化山羊黄体细胞分泌孕酮的影响 | 第31-40页 |
4.1 材料 | 第31页 |
4.1.1 细胞株 | 第31页 |
4.1.2 主要仪器也试剂 | 第31页 |
4.2 方法 | 第31-34页 |
4.2.1 细胞样本及培养液的收集 | 第31-32页 |
4.2.2 ELISA实验 | 第32-33页 |
4.2.3 手提法提取Total RNA | 第33页 |
4.2.4 反转录 | 第33页 |
4.2.5 引物设计 | 第33-34页 |
4.2.6 RT-PCR | 第34页 |
4.3 结果 | 第34-38页 |
4.3.1 VEGF对单独培养黄体细胞孕酮分泌的影响 | 第34-35页 |
4.3.2 VEGF对共培养细胞孕酮分泌的影响 | 第35页 |
4.3.3 SU1498对共培养细胞孕酮分泌的影响 | 第35-37页 |
4.3.4 RT-PCR实验结果 | 第37-38页 |
4.4 讨论 | 第38-39页 |
4.5 小结 | 第39-40页 |
结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-47页 |
缩略词 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
作者简介 | 第49页 |