| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第11-17页 |
| 第一章 MSCs对炎性相关结直肠癌模型小鼠肿瘤发生的影响 | 第17-23页 |
| 1.1 引言 | 第17页 |
| 1.2 实验材料 | 第17-18页 |
| 1.2.1 实验对象 | 第17页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.2.3 主要仪器设备 | 第18页 |
| 1.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 1.3.1 实验动物分组 | 第18页 |
| 1.3.2 小鼠结肠癌模型的诱导和治疗 | 第18-19页 |
| 1.3.3 小鼠肿瘤发生的宏观统计 | 第19页 |
| 1.3.4 免疫组化检测小鼠结肠肿瘤增殖 | 第19页 |
| 1.3.5 数据分析 | 第19页 |
| 1.4 实验结果与分析 | 第19-22页 |
| 1.4.1 MSCs干预可以显著缓解AOM/DSS诱导的结肠癌小鼠肿瘤的宏观症状 | 第19-21页 |
| 1.4.2 MSCs干预抑制了AOM/DSS诱导的结肠组织中Ki-67和PCNA的表达 | 第21-22页 |
| 1.5 讨论 | 第22-23页 |
| 第二章 MSCs在肠炎小鼠体内的迁移及其对炎症的作用分析 | 第23-34页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.1 实验对象 | 第23页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.3 主要仪器设备 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 实验动物分组 | 第24页 |
| 2.3.2 小鼠结肠癌模型的诱导和治疗 | 第24-25页 |
| 2.3.3 CM-DiI法检测MSC在小鼠体内的迁移 | 第25页 |
| 2.3.4 小鼠肠炎病症的宏观评判 | 第25页 |
| 2.3.5 HE染色观察小鼠结肠组织的损伤状况 | 第25-26页 |
| 2.3.6 小鼠结肠部位相关炎症因子的表达水平检测 | 第26-27页 |
| 2.3.7 数据分析 | 第27-28页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第28-31页 |
| 2.4.1 MSCs可以在小鼠体内迁移至炎症发生的结肠部位 | 第28-29页 |
| 2.4.2 MSCs可显著改善AOM/DSS诱导的结肠癌小鼠前期炎症的相关症状 | 第29-31页 |
| 2.4.3 MSCs抑制AOM/DSS诱导的小鼠结肠部位炎症因子IL-1β、IL-6和TNF-α的产生 | 第31页 |
| 2.5 讨论 | 第31-34页 |
| 第三章 MSCs通过诱导Treg细胞分化阻断炎癌转化的机制 | 第34-45页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.2.1 实验对象 | 第34页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.3 主要仪器设备 | 第35页 |
| 3.3 试验方法 | 第35-38页 |
| 3.3.1 实验动物分组及小鼠结肠癌模型的诱导和治疗 | 第35页 |
| 3.3.2 流式细胞术检测小鼠肠系膜淋巴细胞 | 第35-36页 |
| 3.3.3 免疫组化检测小鼠结肠中Treg细胞的浸润 | 第36-37页 |
| 3.3.4 Naive T细胞的分离与培养 | 第37页 |
| 3.3.5 MSCs与T细胞的共培养与检测 | 第37页 |
| 3.3.6 Western Blot检测MSCs诱导Treg分化的分子机制 | 第37-38页 |
| 3.3.7 数据分析 | 第38页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第38-43页 |
| 3.4.1 MSCs对小鼠免疫细胞的调节作用 | 第38-40页 |
| 3.4.2 MSCs体外诱导Naive T细胞向Treg细胞分化 | 第40-41页 |
| 3.4.3 MSCs诱导Treg分化的机制探讨 | 第41-43页 |
| 3.5 讨论 | 第43-45页 |
| 总结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 硕士期间的科研成果 | 第52-53页 |
| 基金支持 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
