| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-17页 |
| 本文中所使用的缩略语 | 第22-23页 |
| 第一章 绪论 | 第23-37页 |
| 1.1 成人T细胞白血病病毒1型简介 | 第23-28页 |
| 1.1.1 HTLV-1 在宿主细胞之间传播的机制 | 第24-26页 |
| 1.1.2 HTLV-1 的增殖周期 | 第26-28页 |
| 1.2 早期反应生长因子的结构及生物学功能 | 第28-34页 |
| 1.2.1 EGR1基因及其产物的结构 | 第28-29页 |
| 1.2.2 EGR1的生物学功能 | 第29页 |
| 1.2.3 EGR1与细胞生长的关系 | 第29-30页 |
| 1.2.4 EGR1与肿瘤关系 | 第30-31页 |
| 1.2.5 EGR1在基因表达调控中的作用 | 第31-33页 |
| 1.2.6 EGR1的其它生物学功能 | 第33-34页 |
| 1.3 本研究的立项依据及意义 | 第34-35页 |
| 1.4 本课题研究内容 | 第35-37页 |
| 第二章 本论文研究的目的、内容、特色、实验方案 | 第37-45页 |
| 2.1 研究目的 | 第37页 |
| 2.2 研究内容 | 第37-39页 |
| 2.2.1 EGR1在Tax蛋白阳性细胞中的表达 | 第37页 |
| 2.2.2 EGR1的表达调控特性研究 | 第37-38页 |
| 2.2.3 NFκB对EGR1调控的研究 | 第38页 |
| 2.2.4 EGR1的生物学作用研究 | 第38页 |
| 2.2.5 EGR1功能特性的分子机制 | 第38页 |
| 2.2.6 HTLV-1 在Hela细胞中的复制动力学 | 第38页 |
| 2.2.7 EGR1在HTLV-1 复制动力学中的作用 | 第38-39页 |
| 2.3 本研究的特色和创新之处 | 第39-40页 |
| 2.4 本研究实验方案的设计 | 第40-45页 |
| 2.4.1 EGR1在HTLV-1 宿主细胞中的表达研究 | 第40-41页 |
| 2.4.2 HTLV-1 感染细胞中EGR1转录调控特性分析 | 第41-42页 |
| 2.4.3 EGR1在HTLV-1 感染细胞中作用机制的探讨 | 第42-43页 |
| 2.4.4 EGR1对HTLV-1 复制动力学的影响 | 第43-45页 |
| 第三章 EGR1在HTLV-1 感染细胞中的表达 | 第45-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-47页 |
| 3.1.1 细胞株和质粒 | 第46页 |
| 3.1.2 常用抗体及PCR引物 | 第46-47页 |
| 3.1.3 细胞培养试剂 | 第47页 |
| 3.2 实验方法 | 第47-55页 |
| 3.2.1 免疫印迹技术 | 第47-49页 |
| 3.2.2 细胞转染 | 第49-50页 |
| 3.2.3 质粒提取 | 第50-51页 |
| 3.2.4 细胞共培养模型 | 第51-52页 |
| 3.2.5 免疫共沉淀 | 第52-53页 |
| 3.2.6 real-time PCR | 第53-54页 |
| 3.2.7 统计学处理 | 第54-55页 |
| 3.3 实验结果 | 第55-62页 |
| 3.3.1 EGR1在HTLV-1 病毒阳性细胞系中的表达 | 第55-58页 |
| 3.3.2 EGR1在Tax蛋白阳性细胞中的表达 | 第58-60页 |
| 3.3.3 EGR1在细胞共培养模型中的表达 | 第60-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-66页 |
| 第四章 EGR1在HTLV-1 阳性细胞中表达调控特性 | 第66-84页 |
| 4.1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 4.1.1 细胞株和质粒 | 第67页 |
| 4.1.2 试剂 | 第67-68页 |
| 4.2 实验方法 | 第68-72页 |
| 4.2.1 荧光素酶报告基因检测 | 第68-69页 |
| 4.2.2 凝胶电泳迁移率实验 | 第69页 |
| 4.2.3 染色体免疫共沉淀（ChIP） | 第69-72页 |
| 4.2.4 生物信息学分析 | 第72页 |
| 4.3 实验结果 | 第72-81页 |
| 4.3.1 EGR1荧光素酶报告基因的构建及初筛 | 第72-77页 |
| 4.3.2 干扰NFκB对EGR1表达调控的影响 | 第77-81页 |
| 4.4 讨论 | 第81-84页 |
| 第五章 EGR1的生物学功能及分子机制 | 第84-96页 |
| 5.1 材料与方法 | 第85-86页 |
| 5.1.1 细胞株和质粒 | 第85页 |
| 5.1.2 常用试剂 | 第85-86页 |
| 5.1.3 细胞培养试剂 | 第86页 |
| 5.2 实验方法 | 第86页 |
| 5.2.1 免疫印迹 | 第86页 |
| 5.2.2 荧光素酶报告基因检测 | 第86页 |
| 5.3 实验结果 | 第86-92页 |
| 5.3.1 pcDNA3.0-EGR1过表达载体的构建 | 第86-87页 |
| 5.3.2 过表达EGR1对NFκB亚基p65表达的影响 | 第87-92页 |
| 5.4 讨论 | 第92-96页 |
| 第六章 EGR1对HTLV-1 复制动力学的影响 | 第96-112页 |
| 6.1 材料与方法 | 第97页 |
| 6.1.1 细胞株和质粒 | 第97页 |
| 6.1.2 常用试剂 | 第97页 |
| 6.1.3 细胞和细菌培养培养试剂 | 第97页 |
| 6.2 实验方法 | 第97-98页 |
| 6.2.1 免疫印迹 | 第97-98页 |
| 6.2.2 荧光素酶报告基因检测 | 第98页 |
| 6.2.3 免疫荧光 | 第98页 |
| 6.3 结果 | 第98-108页 |
| 6.3.1 HTLV-1 在Hela细胞中的复制动力学 | 第98-100页 |
| 6.3.2 HTLV-1 早期感染后宿主细胞状态分析 | 第100-104页 |
| 6.3.3 EGR1在HTLV-1 复制早期宿主细胞状态中的作用 | 第104-108页 |
| 6.4 讨论 | 第108-112页 |
| 第七章 主要结论及展望 | 第112-114页 |
| 7.1 主要结论 | 第112-113页 |
| 7.2 展望 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-136页 |
| 攻读博士期间发表论文及学术交流 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
