| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一部分 前言 | 第12-27页 |
| 1 文献综述 | 第12-26页 |
| ·百合的种质资源及育种方向 | 第12-16页 |
| ·百合的种质资源 | 第12-14页 |
| ·百合的育种方向 | 第14-16页 |
| ·百合的组织培养技术 | 第16-18页 |
| ·百合的分子育种 | 第18-21页 |
| ·植物的AG同源基因 | 第21-22页 |
| ·植物CBF基因家族 | 第22-23页 |
| ·RNAi技术 | 第23-24页 |
| ·利用基因工程创造植物雄性不育 | 第24-26页 |
| ·通过核酸酶基因的特异空间表达创造雄性不育系 | 第24-25页 |
| ·利用反义基因获得植物雄性不育 | 第25页 |
| ·改变激素含量与比例获得雄性不育植株 | 第25页 |
| ·利用外源细胞毒素基因的特异表达获得雄性不育植株 | 第25页 |
| ·使胼胝质壁提前降解获得雄性不育植株 | 第25-26页 |
| 2 研究目的和意义 | 第26-27页 |
| 第二部分 百合高频再生体系的建立 | 第27-47页 |
| 1 材判与方法 | 第27-31页 |
| ·试验材料 | 第27页 |
| ·试验条件 | 第27页 |
| ·主要药品及基本培养基 | 第27-28页 |
| ·试验方法 | 第28-31页 |
| ·百合鳞片薄层切片的间接再生途径 | 第28-29页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第28页 |
| ·愈伤组织的分化 | 第28页 |
| ·再生苗的鳞茎膨大试验 | 第28-29页 |
| ·百合鳞片的直接再生途径 | 第29-31页 |
| ·不同蔗糖浓度对比 | 第29-30页 |
| ·大量元素浓度对比 | 第30页 |
| ·BA,NAA的不同组合的对比 | 第30页 |
| ·不同水杨酸浓度的对比 | 第30页 |
| ·不同多效唑浓度的对比 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-44页 |
| ·愈伤组织诱导及再分化途径各因素影响情况 | 第31-36页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第31-33页 |
| ·愈伤组织的再分化 | 第33-35页 |
| ·再生苗鳞茎膨大情况 | 第35-36页 |
| ·鳞片直接再生途径中各因素的影响 | 第36-44页 |
| ·不同蔗糖浓度对鳞茎诱导及生长的影响 | 第36-38页 |
| ·不同大量元素浓度对鳞茎诱导及生长的影响 | 第38-40页 |
| ·不同激素(BA,NAA)及其配比对鳞茎诱导及生长的影响 | 第40-41页 |
| ·不同浓度水杨酸对鳞茎诱导及生长的影响 | 第41-42页 |
| ·不同浓度多效唑对鳞茎诱导及生长的影响 | 第42-44页 |
| 3 讨论 | 第44-47页 |
| ·鳞片直接再生小鳞茎途径 | 第44-45页 |
| ·薄层切片培养体系中各因素的影响 | 第45页 |
| ·百合愈伤组织的分化 | 第45-47页 |
| 第三部分 农杆菌介导的百合遗传转化 | 第47-61页 |
| 1 材料与方法 | 第47-53页 |
| ·试验材料 | 第47页 |
| ·农杆菌菌株与目的基因载体 | 第47页 |
| ·主要药品和设备 | 第47-48页 |
| ·试验培养基 | 第48-49页 |
| ·试验方法 | 第49-53页 |
| ·Kan对百合鳞片、愈伤组织的抗性筛选 | 第49页 |
| ·以百合小鳞茎薄层切片为转化受体的遗传转化 | 第49-50页 |
| ·以百合愈伤组织为转化受体的遗传转化 | 第50-51页 |
| ·百合基因组DNA的提取 | 第51-53页 |
| ·CTAB法提取百合基因组DNA | 第51-52页 |
| ·NaOH裂解法快速提取百合基因组DNA | 第52-53页 |
| ·遗传转化抗性苗的分子检测 | 第53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-58页 |
| ·卡那霉素对小鳞片切片、愈伤组织的抗性筛选 | 第53-54页 |
| ·转基因植株的获得 | 第54-58页 |
| 3 讨论 | 第58-61页 |
| ·选择抗生素的使用 | 第58页 |
| ·农杆菌介导法中培养基成分对转化率的影响 | 第58-59页 |
| ·农杆菌介导法中培养基pH值对转化率的影响 | 第59页 |
| ·农杆菌介导法中受体材料对转化率的影响 | 第59-60页 |
| ·转化体的筛选 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-72页 |
| 致谢 | 第72页 |