总状共头霉SPSR的克隆及其在大肠杆菌中的表达
目录 | 第1-5页 |
摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 前言 | 第7-21页 |
·总状共头霉及其代谢产物杀虫活性的介绍 | 第8-9页 |
·天冬氨酸蛋白酶 | 第9-14页 |
·天冬氨酸蛋白酶的来源与分类 | 第10页 |
·天冬氨酸蛋白酶的结构与功能 | 第10-11页 |
·天冬氨酸蛋白酶的研究进展 | 第11-14页 |
·天冬氨酸蛋白酶的应用 | 第14页 |
·大肠杆菌表达系统 | 第14-17页 |
·大肠杆菌表达系统的宿主细胞 | 第14-15页 |
·大肠杆菌表达系统的载体 | 第15-16页 |
·影响外源蛋白表达的因素 | 第16-17页 |
·包涵体 | 第16-17页 |
·外源蛋白容易被宿主蛋白酶解 | 第17页 |
·发酵条件的影响 | 第17页 |
·pET载体系统 | 第17-20页 |
·pET载体系统的优越性 | 第18页 |
·本研究采用表达载体特征 | 第18-20页 |
·本论文的研究目的和研究内容 | 第20-21页 |
2 材料与方法 | 第21-36页 |
·实验材料 | 第21-24页 |
·菌株与质粒 | 第21页 |
·主要试剂 | 第21-22页 |
·工具酶 | 第21页 |
·试剂盒 | 第21页 |
·主要化学试剂 | 第21-22页 |
·Marker | 第22页 |
·培养基和溶液 | 第22-24页 |
·培养基 | 第22-23页 |
·相关溶液 | 第23-24页 |
·主要仪器设备 | 第24页 |
·实验方法 | 第24-36页 |
·总状共头霉天冬氨酸类蛋白酶基因的克隆 | 第24-27页 |
·总状共头霉的总RNA提取 | 第24-25页 |
·RT-PCR扩增 | 第25-26页 |
·RT-PCR产物的纯化 | 第26-27页 |
·DNA片段的双酶切 | 第27页 |
·DNA片段的纯化 | 第27页 |
·克隆载体的构建及转化大肠杆菌 | 第27-30页 |
·pUC18质粒的双酶切 | 第27-28页 |
·pUC18质粒双酶切片段的纯化 | 第28页 |
·连接反应 | 第28页 |
·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第28页 |
·连接产物转化E.coli DH5α | 第28-29页 |
·重组子的筛选 | 第29页 |
·重组子质粒的提取 | 第29页 |
·重组子质粒的酶切鉴定 | 第29-30页 |
·目的基因的测序 | 第30页 |
·表达载体的构建以及转化大肠杆菌 | 第30-36页 |
·目的片段的pfu扩增 | 第30-31页 |
·表达载体的选择 | 第31页 |
·表达载体与目的片段的双酶切 | 第31页 |
·载体与目的片段的纯化 | 第31页 |
·目的片段与四种载体的连接反应 | 第31-32页 |
·连接产物的转化 | 第32-33页 |
·转化子的诱导表达 | 第33-34页 |
·SDS-PAGE法鉴定转化子 | 第34-36页 |
3 结果与讨论 | 第36-51页 |
·总状共头霉天冬氨酸类蛋白酶基因的克隆 | 第36-38页 |
·总状共头霉的总RNA提取 | 第36页 |
·RT-PCR扩增目的基因 | 第36-38页 |
·克隆载体的构建及转化大肠杆菌 | 第38-41页 |
·pUC18载体 | 第38-39页 |
·克隆载体pUC18-SPSR的构建 | 第39页 |
·转化大肠杆菌 | 第39-40页 |
·重组子的筛选和鉴定 | 第40-41页 |
·目的基因的序列测定结果 | 第41页 |
·表达载体的构建以及转化大肠杆菌 | 第41-51页 |
·目的片段的Pfu扩增 | 第41-42页 |
·表达载体的选择 | 第42-46页 |
·表达载体pET-SPSR的构建 | 第46页 |
·目的片段与四种表达载体的连接 | 第46-47页 |
·连接产物转化大肠杆菌DH5α及PCR鉴定 | 第47页 |
·连接产物转化大肠杆菌DH5α及PCR鉴定 | 第47-48页 |
·大肠杆菌转化子表达蛋白的SDS-PAGE结果 | 第48-51页 |
4 全文总结与展望 | 第51-52页 |
·本论文的主要结论 | 第51页 |
·本论文的创新点 | 第51页 |
·展望 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
研究生阶段发表论文情况 | 第60页 |
研究生阶段参与课题情况 | 第60-61页 |
附录Ⅰ | 第61-64页 |