| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 简略词简表 | 第9-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-48页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 关节软骨的结构与功能 | 第15-17页 |
| 1.3 软骨修复面临的问题 | 第17-18页 |
| 1.4 软骨组织工程 | 第18-45页 |
| 1.4.1 种子细胞 | 第19-20页 |
| 1.4.2 支架材料 | 第20-37页 |
| 1.4.2.1 透明质酸 | 第21-22页 |
| 1.4.2.2 硫酸软骨素 | 第22-23页 |
| 1.4.2.3 果胶 | 第23-24页 |
| 1.4.2.4 壳聚糖 | 第24-25页 |
| 1.4.2.5 海藻酸盐 | 第25-26页 |
| 1.4.2.6 葡萄聚糖 | 第26-27页 |
| 1.4.2.7 肝素 | 第27页 |
| 1.4.2.8 琼脂糖 | 第27-28页 |
| 1.4.2.9 普兰多糖 | 第28-29页 |
| 1.4.2.10 胶原 | 第29-30页 |
| 1.4.2.11 明胶 | 第30-31页 |
| 1.4.2.12 纤维蛋白 | 第31-32页 |
| 1.4.2.13 蚕丝蛋白 | 第32页 |
| 1.4.2.14 聚羟基脂肪酸类 | 第32-34页 |
| 1.4.2.15 聚酯类 | 第34-35页 |
| 1.4.2.16 聚醇类 | 第35-36页 |
| 1.4.2.17 聚氨基酸类 | 第36-37页 |
| 1.4.3 水凝胶交联策略 | 第37-43页 |
| 1.4.3.1 物理交联 | 第37-38页 |
| 1.4.3.2 化学交联 | 第38-41页 |
| 1.4.3.3 生物型交联 | 第41-42页 |
| 1.4.3.4 超分子自组装交联 | 第42-43页 |
| 1.4.4 信号分子 | 第43-45页 |
| 1.5 课题的提出 | 第45-46页 |
| 1.6 论文研究目的、意义及内容 | 第46-48页 |
| 第二章 酶交联羧甲基普兰多糖/硫酸软骨素注射性水凝胶的制备及性能研究 | 第48-75页 |
| 2.1 引言 | 第48-50页 |
| 2.2 材料与方法 | 第50-54页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第50-51页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第51页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.2.3.1 羧甲基普兰多糖制备 | 第51-52页 |
| 2.2.3.2 酪胺化羧甲基普兰多糖和硫酸软骨合成 | 第52页 |
| 2.2.3.3 水凝胶制备 | 第52页 |
| 2.2.3.4 凝胶时间测定 | 第52页 |
| 2.2.3.5 形态学分析 | 第52-53页 |
| 2.2.3.6 流变学分析 | 第53页 |
| 2.2.3.7 压缩模量测定 | 第53页 |
| 2.2.3.8 平衡溶胀率测定 | 第53-54页 |
| 2.2.3.9 体外降解行为 | 第54页 |
| 2.2.3.10 数据处理与分析 | 第54页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第54-73页 |
| 2.3.1 羧甲基普兰多糖制备 | 第54-55页 |
| 2.3.2 酪胺化羧甲基普兰多糖和硫酸软骨合成及表征 | 第55-56页 |
| 2.3.3 水凝胶制备 | 第56-59页 |
| 2.3.4 形态学分析 | 第59-60页 |
| 2.3.5 凝胶时间测定 | 第60-63页 |
| 2.3.6 力学性能分析 | 第63-69页 |
| 2.3.7 溶胀率测定 | 第69-71页 |
| 2.3.8 体外降解行为 | 第71-73页 |
| 2.4 本章小结 | 第73-75页 |
| 第三章 酶交联羧甲基普兰多糖/硫酸软骨素水凝胶的体外及体内研究 | 第75-100页 |
| 3.1 引言 | 第75-76页 |
| 3.2 材料与方法 | 第76-85页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第76-77页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第77页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第77-85页 |
| 3.2.3.1 软骨细胞分离与提取 | 第77-78页 |
| 3.2.3.2 软骨细胞的培养及传代 | 第78页 |
| 3.2.3.3 软骨细胞的包裹 | 第78页 |
| 3.2.3.4 软骨细胞的生存和增殖 | 第78-79页 |
| 3.2.3.5 q-PCR检测基因表达 | 第79-81页 |
| 3.2.3.6 免疫荧光染色 | 第81-82页 |
| 3.2.3.7 免疫印迹分析蛋白表达 | 第82-83页 |
| 3.2.3.8 总胶原含量测定 | 第83-84页 |
| 3.2.3.9 体内组织相容性研究 | 第84页 |
| 3.2.3.10 数据处理与分析 | 第84-85页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第85-98页 |
| 3.3.1 软骨细胞的提取及培养 | 第85-86页 |
| 3.3.2 软骨细胞的包裹 | 第86页 |
| 3.3.3 软骨细胞的生存和增殖 | 第86-89页 |
| 3.3.4 q-PCR检测基因表达 | 第89-91页 |
| 3.3.5 免疫荧光染色 | 第91页 |
| 3.3.6 免疫印迹分析蛋白表达 | 第91-94页 |
| 3.3.7 总胶原含量测定 | 第94-96页 |
| 3.3.8 体内组织相容性研究 | 第96-98页 |
| 3.4 本章小结 | 第98-100页 |
| 第四章 自交联RGD功能化果胶/透明质酸注射性水凝胶的制备及性能研究 | 第100-121页 |
| 4.1 引言 | 第100-102页 |
| 4.2 材料与方法 | 第102-106页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第102页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第102-103页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第103-106页 |
| 4.2.3.1 己二酰肼化透明质酸的合成 | 第103页 |
| 4.2.3.2 生物功能化果胶 | 第103-104页 |
| 4.2.3.3 水凝胶制备 | 第104页 |
| 4.2.3.4 热重分析 | 第104-105页 |
| 4.2.3.5 形态学分析 | 第105页 |
| 4.2.3.6 凝胶时间测定 | 第105页 |
| 4.2.3.7 流变学分析 | 第105页 |
| 4.2.3.8 压缩模量测定 | 第105页 |
| 4.2.3.9 平衡溶胀率测定 | 第105-106页 |
| 4.2.3.10 体外降解行为 | 第106页 |
| 4.2.3.11 数据处理与分析 | 第106页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第106-120页 |
| 4.3.1 己二酰肼化透明质酸合成及表征 | 第106-107页 |
| 4.3.2 生物功能化果胶 | 第107页 |
| 4.3.3 水凝胶制备 | 第107-108页 |
| 4.3.4 热重分析 | 第108-109页 |
| 4.3.5 形态学分析 | 第109页 |
| 4.3.6 平衡溶胀率测定 | 第109-115页 |
| 4.3.7 凝胶时间测定 | 第115-116页 |
| 4.3.8 力学性能分析 | 第116-117页 |
| 4.3.9 体外降解行为 | 第117-120页 |
| 4.4 本章小结 | 第120-121页 |
| 第五章 自交联RGD功能化果胶/透明质酸水凝胶的体外及体内研究 | 第121-143页 |
| 5.1 引言 | 第121页 |
| 5.2 材料与方法 | 第121-125页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第121-123页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第123页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第123-125页 |
| 5.2.3.1 软骨细胞分离与提取 | 第123页 |
| 5.2.3.2 软骨细胞的培养及传代 | 第123页 |
| 5.2.3.3 软骨细胞的包裹 | 第123-124页 |
| 5.2.3.4 软骨细胞的生存和增殖 | 第124页 |
| 5.2.3.5 q-PCR检测基因表达 | 第124页 |
| 5.2.3.6 免疫荧光染色 | 第124-125页 |
| 5.2.3.7 基质分泌含量测定 | 第125页 |
| 5.2.3.8 体内组织相容性研究 | 第125页 |
| 5.2.3.9 数据处理与分析 | 第125页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第125-142页 |
| 5.3.1 软骨细胞的包裹 | 第125-126页 |
| 5.3.2 软骨细胞的生存和增殖 | 第126-129页 |
| 5.3.3 q-PCR检测基因表达 | 第129-130页 |
| 5.3.4 免疫荧光染色 | 第130-131页 |
| 5.3.5 基质分泌含量测定 | 第131-137页 |
| 5.3.6 体内组织相容性研究 | 第137-142页 |
| 5.4 本章小结 | 第142-143页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第143-146页 |
| 6.1 全文总结 | 第143-144页 |
| 6.2 全文展望 | 第144-146页 |
| 参考文献 | 第146-175页 |
| 致谢 | 第175-177页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第177-179页 |
