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蚊虫拟除虫菊酯类杀虫剂抗性基因的研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
1 文献综述第11-15页
    1.1 蚊虫抗药性机理第11-12页
        1.1.1 代谢抗性第11-12页
        1.1.2 靶标抗性第12页
    1.2 蚊虫抗性相关新基因研究现状第12-15页
        1.2.1 丝氨酸蛋白酶基因家族第12-13页
        1.2.2 视蛋白基因第13页
        1.2.3 蚊核糖体蛋白基因第13-14页
        1.2.4 其他相关基因第14-15页
2 致倦库蚊拟除虫菊酯抗性相关新基因的研究第15-32页
    2.1 材料与方法第15-19页
        2.1.1 供试蚊虫第15页
        2.1.2 主要试剂第15-16页
        2.1.3 主要仪器第16页
        2.1.4 幼虫的生物测定第16-17页
        2.1.5 引物设计第17页
        2.1.6 群体蚊虫基因组RNA的提取第17-18页
        2.1.7 逆转录与PCR扩增第18页
        2.1.8 PCR产物的回收与克隆第18页
        2.1.9 制备基因标准品及构建标准曲线第18-19页
        2.1.10 致倦库蚊基因的定量分析第19页
        2.1.11 致倦库蚊基因表达量与抗性相关性研究第19页
    2.2 结果第19-30页
        2.2.1 致倦库蚊幼虫对溴氰菊酯抗性的生物测定第19-20页
        2.2.2 RNA电泳检测第20页
        2.2.3 致倦库蚊基因扩增结果第20-21页
        2.2.4 RNA浓度与纯度检测第21页
        2.2.5 标准品质粒初始浓度与纯度及初始拷贝浓度计算第21-22页
        2.2.6 基因熔解曲线和标准曲线的制作第22-27页
        2.2.7 致倦库蚊基因表达量分析第27-28页
        2.2.8 基因表达量与对溴氰菊酯的抗性之间的关系第28-30页
    2.3 讨论第30-32页
3 埃及伊蚊钠离子通道基因与抗性关系的研究第32-45页
    3.1 材料和方法第32-36页
        3.1.0 实验蚊虫第32页
        3.1.1 主要试剂第32-33页
        3.1.2 主要仪器第33页
        3.1.3 幼虫的生物测定-浸渍法第33页
        3.1.4 设计引物第33-34页
        3.1.5 群体蚊虫基因组RNA的提取第34-35页
        3.1.6 逆转录与PCR扩增第35页
        3.1.7 PCR产物的回收与克隆第35页
        3.1.8 重组质粒的筛选与鉴定第35页
        3.1.9 点突变扩增引物的选择第35页
        3.1.10 单只蚊虫基因组RNA的提取第35-36页
        3.1.11 逆转录与PCR特异性扩增第36页
        3.1.12 埃及伊蚊钠离子通道基因突变频率与抗性相关性研究第36页
    3.2 结果第36-43页
        3.2.1 埃及伊蚊幼虫对杀虫剂抗性的生物测定第36-37页
        3.2.2 钠离子通道基因全长第37-38页
        3.2.3 序列分析第38页
        3.2.4 突变频率的计算第38-39页
        3.2.5 埃及伊蚊钠离子通道基因双突变研究第39-40页
        3.2.6 埃及伊蚊钠离子通道基因突变频率与抗性相关性研究第40-42页
        3.2.7 埃及伊蚊钠离子通道基因突变频率与抗性相关性研究第42-43页
    3.3 讨论第43-45页
4 结论第45-46页
    4.1 致倦库蚊和埃及伊蚊抗性水平检测结果第45页
    4.2 致倦库蚊目的基因表达量与对溴氰菊酯的抗性之间的关系第45页
    4.3 埃及伊蚊钠离子通道基因上存在的基因突变第45页
    4.4 埃及伊蚊钠离子通道基因突变频率的计算第45页
    4.5 埃及伊蚊钠离子通道基因突变频率与抗性的相关性研究第45-46页
参考文献第46-54页
致谢第54页

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