| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-10页 |
| 1 前言 | 第13-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-19页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂与材料 | 第16-17页 |
| 2.1.3 主要溶液配制 | 第17-18页 |
| 2.1.4 细胞株 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-28页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第19页 |
| 2.2.2 氧化应激损伤细胞模型的构建 | 第19-20页 |
| 2.2.3 qRT-PCR(实时荧光定量逆转录聚合酶链反应) | 第20-22页 |
| 2.2.4 WesternBlot(蛋白免疫印迹法) | 第22-23页 |
| 2.2.5 reverseChIP(反向染色质免疫共沉淀) | 第23-25页 |
| 2.2.6 ChIP-qPCR(染色质免疫沉淀联合定量PCR实验) | 第25-28页 |
| 2.3 统计学分析方法 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-40页 |
| 3.1 氧化应激状态下HEI-OC1细胞Prestin的表达水平 | 第29-31页 |
| 3.1.1 氧化应激状态下HEI-OC1细胞Prestin蛋白的表达水平 | 第29-30页 |
| 3.1.2 氧化应激状态下HEI-OC1细胞PrestinmRNA的表达水平 | 第30-31页 |
| 3.2 氧化应激状态下调控Prestin基因转录因子的筛选 | 第31-33页 |
| 3.2.1 Prestin基因启动子区域结合蛋白的识别 | 第31-32页 |
| 3.2.2 氧化应激状态下HEI-OC1细胞转录因子mRNA的相对表达量 | 第32-33页 |
| 3.3 转录因子AP-2δ与Prestin基因间的相互作用 | 第33-36页 |
| 3.3.1 转录因子AP-2δ与Prestin基因的结合 | 第33-34页 |
| 3.3.2 转录因子AP-2δ有效siRNA片段的筛选 | 第34-35页 |
| 3.3.3 转录因子AP-2δ对Prestin基因的调控作用 | 第35-36页 |
| 3.4 氧化应激状态下转录因子AP-2δ的表达水平 | 第36-40页 |
| 3.4.1 氧化应激状态下HEI-OC1细胞AP-2δmRNA的表达水平 | 第36-38页 |
| 3.4.2 氧化应激状态下HEI-OC1细胞AP-2δ蛋白的表达水平 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 氧化应激状态下HEI-OC1细胞Prestin呈代偿性机制表达 | 第40-42页 |
| 4.2 转录因子AP-2δ是Prestin基因的负调控因子 | 第42-44页 |
| 5 结论与展望 | 第44-45页 |
| 5.1 结论 | 第44页 |
| 5.2 不足之处及展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 综述 | 第50-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 附录 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第66页 |
