| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 研究问题的由来 | 第10页 |
| 1.2 文献综述 | 第10-18页 |
| 1.2.1 卵巢发育 | 第10-13页 |
| 1.2.2 颗粒细胞和膜细胞在卵泡发育中的作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3 雌激素在卵巢发育过程中的调控 | 第14-16页 |
| 1.2.4 高通量测序技术 | 第16-18页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-30页 |
| 2.1 材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-30页 |
| 2.2.1 实验动物选择与样品采集 | 第20页 |
| 2.2.2 RNA提取以及qPCR | 第20-23页 |
| 2.2.3 RNA测序分析 | 第23-24页 |
| 2.2.4 工具与分析方法 | 第24-26页 |
| 2.2.5 双荧光素酶载体构建 | 第26-28页 |
| 2.2.6 ESR2过表达载体构建 | 第28-29页 |
| 2.2.7 细胞转染 | 第29页 |
| 2.2.8 双荧光素报告系统检测 | 第29-30页 |
| 3 试验结果与分析 | 第30-52页 |
| 3.1 CYP19A1在鸡卵泡中的时空表达 | 第30页 |
| 3.2 测序TotalRNA提取和质检 | 第30-31页 |
| 3.3 测序数据处理与质控 | 第31-33页 |
| 3.4 基因表达差异分析 | 第33-39页 |
| 3.4.1 颗粒细胞层／膜细胞层特异表达基因 | 第34页 |
| 3.4.2 颗粒细胞层／膜细胞层偏好表达基因 | 第34-39页 |
| 3.5 共表达网络分析 | 第39-46页 |
| 3.5.1 去除离群样本 | 第39页 |
| 3.5.2 确定软阈值 | 第39-40页 |
| 3.5.3 确定基因模块 | 第40-41页 |
| 3.5.4 数据网络模块比较 | 第41-42页 |
| 3.5.5 模块与性状之间的关系 | 第42-43页 |
| 3.5.6 相关模块核心基因筛选 | 第43-46页 |
| 3.6 CYP19A1调节转录因子筛选 | 第46-47页 |
| 3.7 表达差异基因验证 | 第47-48页 |
| 3.8 双荧光素酶报告系统检测 | 第48-52页 |
| 3.8.1 CYP19A1启动子双荧光素酶报告基因载体构建 | 第48-49页 |
| 3.8.2 ESR2过表达载体的构建 | 第49页 |
| 3.8.3 CYP19A1启动子缺失片段活性检测 | 第49-50页 |
| 3.8.4 ESR2对CYP19A1启动子活性的影响 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-56页 |
| 5 结果与展望 | 第56-58页 |
| 5.1 本研究的主要结果与结论 | 第56页 |
| 5.1.1 主要结果 | 第56页 |
| 5.1.2 主要结论 | 第56页 |
| 5.2 本研究的创新点 | 第56-57页 |
| 5.3 下一步计划 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-70页 |
| 在读期间发表论文 | 第70-71页 |
| 附录 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77页 |