| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 缩略语 | 第12-14页 |
| 第一部分 水稻粒型基因SGL的图位克隆和功能分析 | 第14-64页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-32页 |
| 1 水稻粒型性状的研究概况 | 第14-24页 |
| 1.1 水稻粒型QTLs基因的克隆 | 第15-20页 |
| 1.2 水稻籽粒大小调控的分子机制 | 第20-24页 |
| 2 kinesin蛋白对植物生长发育的调控 | 第24-29页 |
| 2.1 驱动蛋白的结构和功能 | 第24-25页 |
| 2.2 植物驱动蛋白是细胞的分裂和生长必须的 | 第25-29页 |
| 2.3 植物kinesin蛋白对籽粒大小的调控 | 第29页 |
| 3 本研究目的和意义 | 第29-32页 |
| 第二章 水稻粒型基因SGL的图位克隆及功能分析 | 第32-52页 |
| 1 材料和方法 | 第32-37页 |
| 1.1 材料来源 | 第32页 |
| 1.2 遗传分析及定位群体的构建 | 第32-33页 |
| 1.3 表型的观察 | 第33页 |
| 1.4 外源GA处理实验 | 第33-34页 |
| 1.5 DNA样品制备 | 第34页 |
| 1.6 标记分析 | 第34页 |
| 1.7 水稻总RNA的提取 | 第34页 |
| 1.8 实时荧光定量RT-PCR | 第34-35页 |
| 1.9 系统进化分析 | 第35页 |
| 1.10 洋葱表皮细胞的亚细胞定位 | 第35页 |
| 1.11 转录激活活性检测 | 第35-36页 |
| 1.12 烟草的瞬时表达系统 | 第36页 |
| 1.13 GUS活性检测 | 第36页 |
| 1.14 Western blot | 第36-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-49页 |
| 2.1 突变体表型考察 | 第37-39页 |
| 2.2 种子颖壳及茎秆的细胞学观察 | 第39-40页 |
| 2.3 sgl可能是一个GA缺陷型突变体 | 第40-41页 |
| 2.4 sgl的图位克隆 | 第41-44页 |
| 2.5 SGL编码kinesin-like蛋白SRS3 | 第44-45页 |
| 2.6 SGL的表达分析和亚细胞定位 | 第45-46页 |
| 2.7 GA合成及代谢相关基因荧光定量RT-PCR分析 | 第46-47页 |
| 2.8 SGL蛋白具有转录激活活性 | 第47-48页 |
| 2.9 SGL可能直接激活OsKOs基因的表达 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 第三章 小结 | 第52-54页 |
| 1 结论 | 第52-53页 |
| 1.1 突变体细胞伸长受阻导致其粒长变短及株高变矮 | 第52页 |
| 1.2 突变体sgl可能是一个GA合成缺陷型的突变体 | 第52页 |
| 1.3 SGL编码一个kinesin 13家族蛋白SRS3 | 第52-53页 |
| 1.4 SGL蛋白具有转录激活活性 | 第53页 |
| 1.5 SGL可能直接激活OsKOs基因的表达 | 第53页 |
| 2 本研究的创新之处 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 第二部分 水稻种子休眠QTL位点qSdn-5的图位克隆及功能分析 | 第64-112页 |
| 第一章 文献综述 | 第64-82页 |
| 1 种子休眠 | 第64页 |
| 2 种子休眠调控机制的研究进展 | 第64-72页 |
| 2.1 种子休眠形成机制 | 第64-69页 |
| 2.2 种子休眠破除的调控机制 | 第69-71页 |
| 2.3 环境条件对种子休眠的调控 | 第71-72页 |
| 3 种子休眠的遗传学研究进展 | 第72-80页 |
| 3.1 拟南芥及其它物种种子休眠基因的研究进展 | 第72-76页 |
| 3.2 水稻种子休眠基因的研究进展 | 第76-80页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第80-82页 |
| 第二章 水稻种子休眠QTL位点qSdn-5的图位克隆和功能分析 | 第82-100页 |
| 1 材料与方法 | 第82-86页 |
| 1.1 实验材料 | 第82-83页 |
| 1.2 休眠表型的鉴定 | 第83页 |
| 1.3 DNA样品制备 | 第83页 |
| 1.4 标记分析 | 第83页 |
| 1.5 水稻总RNA的提取 | 第83页 |
| 1.6 实时荧光定量RT-PCR | 第83页 |
| 1.7 载体的构建 | 第83-84页 |
| 1.8 农杆菌转化和水稻愈伤的侵染 | 第84页 |
| 1.9 水稻原生质体的制备及亚细胞定位 | 第84-85页 |
| 1.10 蛋白的原核表达及纯化 | 第85页 |
| 1.11 α-淀粉酶活性测定 | 第85页 |
| 1.12 H_2O_2含量测定 | 第85-86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-97页 |
| 2.1 亲本的发芽表型 | 第86页 |
| 2.2 qSdn-5的精细定位 | 第86-88页 |
| 2.3 定位区间内基因的预测和分析 | 第88-90页 |
| 2.4 过表达转基因结果鉴定 | 第90-91页 |
| 2.5 ORF6基因的RNAi干扰 | 第91页 |
| 2.6 qSdn-5的表达分析 | 第91-92页 |
| 2.7 qSdn-5蛋白定位在高尔基体 | 第92-93页 |
| 2.8 qSdn-5蛋白的原核表达及酶活测定 | 第93-94页 |
| 2.9 种子发育过程中α淀粉酶及H_2O_2含量的测定 | 第94-95页 |
| 2.10 NIL5对ABA的响应更加敏感 | 第95-97页 |
| 3 讨论 | 第97-100页 |
| 第三章 小结 | 第100-102页 |
| 1 结论 | 第100页 |
| 2 本研究的创新之处 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-112页 |
| 附录 | 第112-122页 |
| 在读期间发表论文 | 第122-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
