| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 缩略词表 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-28页 |
| 1.1 卵巢衰退的机制 | 第17-19页 |
| 1.1.1 卵泡数量和卵子质量下降 | 第17-18页 |
| 1.1.2 激素水平变化 | 第18-19页 |
| 1.1.3 mTOR信号通路与能量代谢的变化 | 第19页 |
| 1.2 导致卵巢衰退的因素 | 第19-22页 |
| 1.2.1 基因水平因素 | 第19-20页 |
| 1.2.2 卵巢微环境因素 | 第20-22页 |
| 1.2.3 病理因素 | 第22页 |
| 1.3 天然化合物对卵巢衰退中氧化应激的缓解 | 第22-24页 |
| 1.3.1 白藜芦醇 | 第22-23页 |
| 1.3.2 原花青素 | 第23页 |
| 1.3.3 番茄红素 | 第23-24页 |
| 1.4 家禽卵泡发育过程 | 第24-25页 |
| 1.4.1 家禽卵巢发育过程 | 第24页 |
| 1.4.2 家禽卵泡等级发育 | 第24-25页 |
| 1.5 D-半乳糖诱导衰老模型简介 | 第25-26页 |
| 1.6 本研究的目的和内容 | 第26-28页 |
| 1.6.1 研究的目的和意义 | 第26页 |
| 1.6.2 研究的目标和内容 | 第26-28页 |
| 第二章 不同产蛋阶段蛋鸡卵黄前体物生成的变化 | 第28-44页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-35页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第29页 |
| 2.2.2 主要器材 | 第29-30页 |
| 2.2.3 主要试剂及配制 | 第30-31页 |
| 2.2.4 样品采集 | 第31页 |
| 2.2.5 石蜡切片制作和形态学观察 | 第31-32页 |
| 2.2.6 生化指标测定 | 第32页 |
| 2.2.7 血清雌二醇和孕酮水平测定 | 第32页 |
| 2.2.8 RNA提取 | 第32-33页 |
| 2.2.9 cDNA合成 | 第33页 |
| 2.2.10 RT-PCR和qPCR | 第33-35页 |
| 2.2.11 数据统计分析 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-41页 |
| 2.3.1 不同产蛋阶段蛋鸡卵黄沉积的变化 | 第35-36页 |
| 2.3.2 不同产蛋阶段肝脏、血清、卵巢TG和T-CHO水平变化 | 第36页 |
| 2.3.3 不同产蛋阶段蛋鸡肝脏形态结构变化 | 第36-37页 |
| 2.3.4 不同产蛋阶段蛋鸡肝脏组织抗氧化能力变化 | 第37页 |
| 2.3.5 不同产蛋阶段蛋鸡血清E_2和P_4水平变化 | 第37-39页 |
| 2.3.6 不同产蛋阶段蛋鸡肝脏ERs表达水平变化 | 第39页 |
| 2.3.7 不同产蛋阶段蛋鸡肝脏卵黄合成和沉积相关基因表达变化 | 第39页 |
| 2.3.8 不同产蛋阶段蛋鸡等级卵泡颗粒层膜层FSHR和LHR表达变化 | 第39-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 不同产蛋阶段蛋鸡卵巢抗氧化能力的变化 | 第44-57页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 材料与方法 | 第45-49页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第45页 |
| 3.2.2 主要器材 | 第45页 |
| 3.2.3 主要试剂及配制 | 第45-46页 |
| 3.2.4 样品采集 | 第46页 |
| 3.2.5 石蜡切片制作和形态学观察 | 第46页 |
| 3.2.6 生化指标测定 | 第46页 |
| 3.2.7 RNA提取、cDNA合成及qPCR | 第46页 |
| 3.2.8 Nrf2免疫组织化学染色 | 第46-48页 |
| 3.2.9 免疫印记分析 | 第48-49页 |
| 3.2.10 数据分析 | 第49页 |
| 3.3 结果 | 第49-55页 |
| 3.3.1 不同产蛋阶段蛋鸡卵巢组织形态的变化 | 第49-50页 |
| 3.3.2 不同产蛋阶段蛋鸡卵巢抗氧化能力的变化 | 第50-52页 |
| 3.3.3 不同产蛋阶段蛋鸡卵巢组织Nrf2/HO-1通路活性的变化 | 第52-54页 |
| 3.3.4 不同产蛋阶段蛋鸡抗氧化能力的变化 | 第54-55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-57页 |
| 第四章 葡萄籽原花青素提取物通过抑制氧化应激延缓蛋鸡卵巢衰老 | 第57-76页 |
| 4.1 前言 | 第57-58页 |
| 4.2 材料与方法 | 第58-62页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第58页 |
| 4.2.2 主要器材 | 第58页 |
| 4.2.3 主要试剂及配制 | 第58-59页 |
| 4.2.4 组织培养 | 第59页 |
| 4.2.5 石蜡切片制作和形态学观察 | 第59页 |
| 4.2.6 透射电镜和细胞超微结构观察 | 第59-60页 |
| 4.2.7 生化指标测定 | 第60页 |
| 4.2.8 RNA提取、cDNA合成及qPCR | 第60页 |
| 4.2.9 BrdU掺入及检测 | 第60-61页 |
| 4.2.10 TUNEL检测 | 第61页 |
| 4.2.11 免疫印记分析 | 第61页 |
| 4.2.12 数据分析 | 第61-62页 |
| 4.3 结果 | 第62-73页 |
| 4.3.1 D-gal诱导衰老卵巢模型的建立 | 第62-64页 |
| 4.3.2 不同剂量GSPE对D-gal诱导衰老卵巢组织的保护作用 | 第64-66页 |
| 4.3.3 GSPE对D-gal诱导衰老卵巢组织形态变化的保护作用 | 第66-67页 |
| 4.3.4 GSPE对D-gal诱导衰老卵巢组织抗氧化能力下降的抑制作用 | 第67-69页 |
| 4.3.5 GSPE对D-gal诱导衰老卵巢组织体细胞增殖率降低的缓解作用 | 第69-70页 |
| 4.3.6 GSPE对D-gal诱导衰老卵巢组织细胞凋亡率升高的抑制作用 | 第70-71页 |
| 4.3.7 GSPE对自然衰老卵巢组织的保护作用 | 第71-73页 |
| 4.4 讨论 | 第73-76页 |
| 第五章 番茄红素通过激活Nrf2/HO-1通路缓解衰老蛋鸡卵巢的氧化应激 | 第76-101页 |
| 5.1 前言 | 第76-77页 |
| 5.2 材料与方法 | 第77-78页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第77页 |
| 5.2.2 主要器材 | 第77页 |
| 5.2.3 主要试剂及配制 | 第77页 |
| 5.2.4 组织培养 | 第77页 |
| 5.2.5 石蜡切片制作和形态学观察 | 第77页 |
| 5.2.6 透射电镜和细胞超微结构观察 | 第77页 |
| 5.2.7 生化指标测定 | 第77-78页 |
| 5.2.8 RNA提取、cDNA合成及qPCR | 第78页 |
| 5.2.9 BrdU掺入及检测 | 第78页 |
| 5.2.10 TUNEL检测 | 第78页 |
| 5.2.11 免疫印记分析 | 第78页 |
| 5.2.12 数据分析 | 第78页 |
| 5.3 结果 | 第78-98页 |
| 5.3.1 不同剂量番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织的保护作用 | 第78-81页 |
| 5.3.2 番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织形态的保护作用 | 第81-82页 |
| 5.3.3 番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织抗氧化能力下降的抑制作用 | 第82-83页 |
| 5.3.4 番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织体细胞增殖率降低的缓解作用 | 第83-85页 |
| 5.3.5 番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织细胞凋亡率升高的抑制作用 | 第85-86页 |
| 5.3.6 番茄红素对D-gal诱导衰老卵巢组织Nrf2/HO-1通路活性降低的缓解作用 | 第86-87页 |
| 5.3.7 番茄红素缓解D-gal诱导衰老卵巢组织氧化应激的作用与Nrf2激活剂DMF相似 | 第87-91页 |
| 5.3.8 番茄红素缓解D-gal诱导衰老卵巢组织氧化应激的作用被Nrf2阻断剂抑制 | 第91-95页 |
| 5.3.9 番茄红素对自然衰老卵巢组织抗氧化能力下降的缓解作用 | 第95-96页 |
| 5.3.10 番茄红素对自然衰老卵巢组织细胞增殖和凋亡的作用 | 第96-97页 |
| 5.3.11 番茄红素对自然衰老卵巢组织Nrf2/HO-1信号通路的激活作用 | 第97-98页 |
| 5.4 讨论 | 第98-101页 |
| 第六章 提示和创新点 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 个人简介 | 第112页 |
