摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
英文缩略语 | 第14-18页 |
第一部分 暴露高氧后新生鼠肺组织Caveolin-1 表达及其作用的研究 | 第18-32页 |
1 前言 | 第18-19页 |
2 实验材料与方法 | 第19-23页 |
2.1 材料 | 第19-20页 |
2.1.1 实验动物 | 第19页 |
2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
2.1.3 主要仪器 | 第20页 |
2.2 方法 | 第20-22页 |
2.2.1 实验对象、分组及BPD大鼠动物模型的建立 | 第20页 |
2.2.2 标本的采集和处理 | 第20页 |
2.2.3 免疫组化技术检测各组肺组织caveolin-1 表达 | 第20-21页 |
2.2.4 Western blot法检测各组肺组织caveolin-1 动态表达 | 第21页 |
2.2.5 Real-time PCR法检测各组肺组织caveolin-1 m RNA的动态表达 | 第21-22页 |
2.3 统计学分析 | 第22-23页 |
3 结果 | 第23-29页 |
3.1 肺组织的形态学改变 | 第23-24页 |
3.2 肺组织纤维化评分 | 第24页 |
3.3 caveolin-1 在空气组和高氧组不同日龄大鼠肺组织的动态表达 | 第24-29页 |
3.3.1 免疫组织化学染色方法观察caveolin-1 在各组不同日龄大鼠肺组织的动态表达 | 第24-29页 |
4 讨论 | 第29-31页 |
5 结论 | 第31-32页 |
第二部分 暴露高氧后新生鼠肺成纤维细胞Caveolin-1 表达及其对细胞周期的影响 | 第32-40页 |
1 前言 | 第32页 |
2 实验材料与方法 | 第32-36页 |
2.1 材料 | 第32-33页 |
2.1.1 实验动物同论文一 | 第32页 |
2.1.2 实验试剂 | 第32-33页 |
2.1.3 实验仪器 | 第33页 |
2.2 方法 | 第33-35页 |
2.2.1 实验对象、分组及BPD模型的建立同论文一 | 第33页 |
2.2.2 体外肺成纤维细胞的分离、培养及鉴定 | 第33-34页 |
2.2.3 Western blot法检测各组肺成纤维细胞caveolin-1 动态表达 | 第34-35页 |
2.2.4 流式细胞技术检测各组肺成纤维细胞的周期 | 第35页 |
2.3 统计学分析 | 第35-36页 |
3 结果 | 第36-38页 |
3.1 原代培养大鼠肺成纤维细胞形态及鉴定结果 | 第36页 |
3.2 Western blot方法检测caveolin-1 在肺成纤维细胞动态表达 | 第36-37页 |
3.3 空气和高氧各组LF细胞周期的变化 | 第37-38页 |
4 讨论 | 第38-39页 |
5 结论 | 第39-40页 |
第三部分 干预TGF-β/SMAD信号转导通路后caveolin-1 的动态表达 | 第40-48页 |
1 前言 | 第40页 |
2 材料和方法 | 第40-43页 |
2.1 材料 | 第40-41页 |
2.1.1 实验动物 | 第40-41页 |
2.1.2 实验试剂 | 第41页 |
2.1.3 实验仪器 | 第41页 |
2.2 方法 | 第41-43页 |
2.2.1 研究对象 | 第41-42页 |
2.2.2 细胞分组 | 第42页 |
2.2.3 Western blot法检测各组成纤维细胞Caveolin-1 的表达 | 第42页 |
2.2.4 Real-time PCR法检测各组成纤维细胞的Caveolin-1 m RNA水平同论文一。 | 第42页 |
2.2.5 流式细胞技术检测各组肺成纤维细胞的周期 | 第42-43页 |
2.3 统计学分析 | 第43页 |
3 结果 | 第43-46页 |
3.1 Western blot法检测Caveolin-1 在各组成纤维细胞中的表达 | 第43-44页 |
3.2 Real-time PCR法检测各组成纤维细胞的Caveolin-1 m RNA水平 | 第44-45页 |
3.3 流式细胞技术检测各组肺成纤维细胞的周期 | 第45-46页 |
4 讨论 | 第46-47页 |
5 结论 | 第47-48页 |
本研究创新性的自我评价 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
综述 | 第54-73页 |
参考文献 | 第62-73页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
个人简历 | 第75页 |