| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-39页 |
| 1.1 小麦杂种优势的研究进展和利用途径 | 第14-20页 |
| 1.1.1 小麦杂种优势的应用 | 第14-15页 |
| 1.1.2 小麦细胞核不育的研究和利用途径 | 第15-16页 |
| 1.1.3 小麦细胞核质互作雄性不育（CMS）的研究及三系杂交育种 | 第16-17页 |
| 1.1.4 小麦光温敏雄性不育及其杂种优势利用 | 第17-18页 |
| 1.1.5 化学杂交剂诱导小麦雄性不育及两系杂交系统 | 第18-20页 |
| 1.2 农药检测方法的研究进展 | 第20-24页 |
| 1.2.1 农药残留的提取和净化 | 第20-22页 |
| 1.2.2 农药残留的分析方法 | 第22-24页 |
| 1.3 植物microRNA的研究进展 | 第24-30页 |
| 1.3.1 植物microRNA的发现 | 第24页 |
| 1.3.2 植物microRNA的生物合成 | 第24-26页 |
| 1.3.3 植物microRNA的作用机制 | 第26-27页 |
| 1.3.4 植物microRNA靶基因的预测和鉴定 | 第27-28页 |
| 1.3.5 植物microRNA的生物学功能 | 第28-30页 |
| 1.4 高通量测序技术的研究现状及其在转录组学研究中的应用 | 第30-37页 |
| 1.4.1 高通量测序技术特点 | 第31-33页 |
| 1.4.2 高通量测序在转录组学研究中的应用 | 第33-34页 |
| 1.4.3 转录组学的研究方法 | 第34-37页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第37-39页 |
| 第二章 小麦植株中化学杂交剂SQ-1 的检测方法和动态消解 | 第39-57页 |
| 2.1 材料与方法 | 第39-40页 |
| 2.1.1 材料及其处理 | 第39-40页 |
| 2.1.2 仪器以及试剂 | 第40页 |
| 2.2 色谱条件 | 第40页 |
| 2.3 样品前处理 | 第40-41页 |
| 2.4 结果与分析 | 第41-54页 |
| 2.4.1 小麦生理型雄性不育育性调查 | 第41页 |
| 2.4.2 小麦花药发育各个时期细胞学观察与分析 | 第41-43页 |
| 2.4.3 分散固相萃取检测小麦籽粒中化学杂交剂SQ-1 含量 | 第43-48页 |
| 2.4.4 QuEChERS法检测小麦叶片中化学杂交剂SQ-1 含量 | 第48-54页 |
| 2.4.5 小麦小花中化学杂交剂SQ-1 的动态消解 | 第54页 |
| 2.5 讨论 | 第54-57页 |
| 第三章 化学杂交剂SQ-1 诱导小麦生理型雄性不育的作用方式 | 第57-75页 |
| 3.1 材料和方法 | 第57-58页 |
| 3.1.1 实验材料及其处理 | 第57页 |
| 3.1.2 实验仪器与试剂 | 第57页 |
| 3.1.3 样品中小麦化学杂交剂SQ-1 的提取和净化 | 第57-58页 |
| 3.1.4 样品中小麦化学杂交剂SQ-1 的检测与分析 | 第58页 |
| 3.2 结果与分析 | 第58-72页 |
| 3.2.1 小麦化学杂交剂SQ-1 的剂量效应 | 第58-60页 |
| 3.2.2 小麦化学杂交剂SQ-1 的作用时效 | 第60-65页 |
| 3.2.3 小麦化学杂交剂SQ-1 在植株体内的作用形式 | 第65-69页 |
| 3.2.4 小麦化学杂交剂SQ-1 的传递方向 | 第69-70页 |
| 3.2.5 小麦化学杂交剂SQ-1 表面活性剂的筛选 | 第70-72页 |
| 3.3 讨论 | 第72-75页 |
| 第四章 小麦生理型雄性不育系和可育系花药小RNA测序及分析 | 第75-99页 |
| 4.1 材料与方法 | 第75-82页 |
| 4.1.1 材料及其处理 | 第75页 |
| 4.1.2 小麦花药总RNA的提取 | 第75-76页 |
| 4.1.3 小麦花药Small RNA文库的构建和高通量测序 | 第76-79页 |
| 4.1.4 小麦花药Small RNA的生物学信息分析 | 第79-81页 |
| 4.1.5 小麦花药mi RNA靶基因的差异表达分析和富集分析 | 第81-82页 |
| 4.2 结果与分析 | 第82-96页 |
| 4.2.1 小麦花药Small RNA测序数据处理及统计分析 | 第82-84页 |
| 4.2.2 小麦花药Small RNA的鉴定和差异表达分析 | 第84-91页 |
| 4.2.3 小麦花药mi RNA的靶基因预测 | 第91-92页 |
| 4.2.4 小麦花药mi RNA的靶基因的功能注释 | 第92-93页 |
| 4.2.5 小麦花药差异表达miRNA的靶基因的富集分析 | 第93-96页 |
| 4.3 讨论 | 第96-99页 |
| 第五章 小麦生理型雄性不育系和可育系花药转录组测序及分析 | 第99-119页 |
| 5.1 材料与方法 | 第99-102页 |
| 5.1.1 材料及其处理 | 第99页 |
| 5.1.2 小麦花药总RNA的提取 | 第99-100页 |
| 5.1.3 小麦花药转录组测序文库的构建 | 第100页 |
| 5.1.4 小麦花药转录组的高通量测序 | 第100页 |
| 5.1.5 小麦花药转录组的生物学信息分析 | 第100-102页 |
| 5.2 结果与分析 | 第102-117页 |
| 5.2.1 小麦花药转录组测序数据的统计和评估 | 第102-104页 |
| 5.2.2 小麦花药unigene组装结果和分析 | 第104-106页 |
| 5.2.3 小麦花药差异表达基因的筛选和分析 | 第106-107页 |
| 5.2.4 小麦花药差异表达基因的功能注释 | 第107-114页 |
| 5.2.5 小麦花药差异表达基因KEGG通路富集分析 | 第114-117页 |
| 5.3 讨论 | 第117-119页 |
| 第六章 总结 | 第119-122页 |
| 6.1 结论 | 第119-121页 |
| 6.1.1 小麦化学杂交剂SQ-1 检测方法的建立和优化 | 第119页 |
| 6.1.2 化学杂交剂SQ-1 诱导小麦生理型雄性不育的作用方式 | 第119页 |
| 6.1.3 小麦生理型雄性不育相关sRNA的表达分析和靶基因预测 | 第119-120页 |
| 6.1.4 小麦生理型雄性不育相关基因的表达分析和功能注释 | 第120页 |
| 6.1.5 小麦生理型雄性不育的简单模型 | 第120-121页 |
| 6.2 本研究创新点 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-133页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第133-134页 |
| 致谢 | 第134-135页 |
| 作者简介 | 第135-136页 |
