| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-31页 |
| 1.1 作物高光效育种研究进展 | 第16-20页 |
| 1.1.1 作物高光效育种概念与意义 | 第16页 |
| 1.1.2 小麦高光效育种途径及进展 | 第16-20页 |
| 1.2 BSMV-VIGS沉默系统 | 第20-23页 |
| 1.2.1 BSMV-VIGS概述与机理 | 第20-22页 |
| 1.2.2 BSMV-VIGS在小麦基因功能研究中的优点 | 第22页 |
| 1.2.3 BSMV-VIGS在小麦基因功能研究中的应用 | 第22-23页 |
| 1.3 光氧化胁迫 | 第23-24页 |
| 1.4 叶绿素荧光 | 第24-26页 |
| 1.4.1 叶绿素荧光动力学的发现 | 第24-25页 |
| 1.4.2 叶绿素荧光动力学的测定及参数意义 | 第25-26页 |
| 1.4.3 叶绿素荧光动力学的应用 | 第26页 |
| 1.5 GRAS转录因子研究进展 | 第26-28页 |
| 1.5.1 GRAS转录因子结构 | 第26-27页 |
| 1.5.2 GRAS转录因子生物学功能研究 | 第27-28页 |
| 1.6 立题意义及依据 | 第28-29页 |
| 1.7 研究技术路线 | 第29-31页 |
| 第二章 利用BSMV-VIGS的方法研究小麦高光效相关基因功能 | 第31-53页 |
| 2.1 材料与方法 | 第31-40页 |
| 2.1.1 植物材料及培养方法 | 第31-32页 |
| 2.1.2 菌种、载体及试剂 | 第32页 |
| 2.1.3 总RNA提取和纯化 | 第32-33页 |
| 2.1.4 c DNA第一链合成 | 第33页 |
| 2.1.5 VIGS载体构建 | 第33-37页 |
| 2.1.6 BSMV-VIGS介导的基因沉默方法 | 第37-38页 |
| 2.1.7 基因沉默效果检测 | 第38-39页 |
| 2.1.8 叶绿素荧光参数测定 | 第39页 |
| 2.1.9 光氧化抗性处理 | 第39页 |
| 2.1.10 叶绿素含量分析 | 第39页 |
| 2.1.11 MDA含量和电导率测定 | 第39-40页 |
| 2.1.12 数据分析 | 第40页 |
| 2.2 结果与分析 | 第40-49页 |
| 2.2.1 VIGS 载体构建 | 第40-41页 |
| 2.2.2 基因沉默分析 | 第41-42页 |
| 2.2.3 BSMV 小麦对常温强光和低温强光的响应 | 第42-43页 |
| 2.2.4 BSMV 小麦对 DCMU 的响应 | 第43-44页 |
| 2.2.5 BSMV 小麦对 MV 的响应 | 第44-45页 |
| 2.2.6 BSMV 小麦对 H2O2的响应 | 第45-46页 |
| 2.2.7 BSMV 小麦叶片 MDA 含量和电导率 | 第46-47页 |
| 2.2.8 氧化剂处理后 BSMV 小麦叶片叶绿素含量变化 | 第47-48页 |
| 2.2.9 BSMV 小麦植株生物量的积累 | 第48-49页 |
| 2.3 结论与讨论 | 第49-53页 |
| 第三章 小麦Ta SCL14 基因分离、定位及强光诱导表达分析 | 第53-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第53-58页 |
| 3.1.1 供试材料及培养条件 | 第53页 |
| 3.1.2 载体、试剂 | 第53页 |
| 3.1.3 强光处理方法 | 第53-54页 |
| 3.1.4 Real-time PCR | 第54页 |
| 3.1.5 DNA提取(试剂盒提取) | 第54-55页 |
| 3.1.6 基因克隆 | 第55页 |
| 3.1.7 亚细胞定位方法 | 第55-57页 |
| 3.1.8 染色体定位方法 | 第57-58页 |
| 3.2 结果与分析 | 第58-64页 |
| 3.2.1 Ta SCL14 基因克隆及序列分析 | 第58-59页 |
| 3.2.2 Ta SCL14 基因染色体定位 | 第59-60页 |
| 3.2.3 Ta SCL14 基因亚细胞定位 | 第60-62页 |
| 3.2.4 Ta SCL14 基因表达 | 第62-64页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第64-66页 |
| 第四章Ta SCL14 基因沉默小麦光合特性及衰老分析 | 第66-79页 |
| 4.1 材料与方法 | 第66-70页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第66页 |
| 4.1.2 试剂及主要仪器 | 第66页 |
| 4.1.3 表型记录方法 | 第66页 |
| 4.1.4 光合特性分析方法 | 第66-67页 |
| 4.1.5 Rubisco酶活分析 | 第67-69页 |
| 4.1.6 SPAD值测定方法 | 第69页 |
| 4.1.7 黑暗诱导叶片衰老方法 | 第69-70页 |
| 4.2 结果与分析 | 第70-76页 |
| 4.2.1 Ta SCL14 基因沉默小麦植株表型动态分析 | 第70-72页 |
| 4.2.2 BSMV:Ta SCL14 小麦植株光合特性分析 | 第72-75页 |
| 4.2.3 BSMV:Ta SCL14 小麦Rubisco酶活分析 | 第75页 |
| 4.2.4 黑暗诱导BSMV:Ta SCL14 小麦叶片衰老特性分析 | 第75-76页 |
| 4.3 结论与讨论 | 第76-79页 |
| 第五章 小麦Ta SCL14 基因在拟南芥中超量表达分析 | 第79-100页 |
| 5.1 材料与方法 | 第79-85页 |
| 5.1.1 植物材料与培养方法 | 第79-80页 |
| 5.1.2 菌株、载体、试剂 | 第80页 |
| 5.1.3 p BI121 载体构建 | 第80-81页 |
| 5.1.4 拟南芥转化 | 第81-82页 |
| 5.1.5 转基因拟南芥PCR鉴定 | 第82-83页 |
| 5.1.6 表型分析 | 第83页 |
| 5.1.7 根尖细胞观察 | 第83-84页 |
| 5.1.8 光合速率测定 | 第84页 |
| 5.1.9 强光处理、氧化剂处理 | 第84页 |
| 5.1.10 基因表达分析 | 第84-85页 |
| 5.2 结果与分析 | 第85-97页 |
| 5.2.1 p BI121::Ta SCL14 超表达载体构建 | 第85-88页 |
| 5.2.2 转Ta SCL14 基因植株分子检测 | 第88-89页 |
| 5.2.3 转基因拟南芥外源基因的表达分析 | 第89页 |
| 5.2.4 转基因拟南芥表型分析 | 第89-91页 |
| 5.2.5 转基因拟南芥根尖细胞形态 | 第91-92页 |
| 5.2.6 转基因拟南芥光合速率 | 第92-94页 |
| 5.2.7 转基因拟南芥光氧化抗性特性 | 第94-97页 |
| 5.2.8 转基因拟南芥中上调表达基因 | 第97页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第97-100页 |
| 第六章Ta SCL14 基因在小麦中转化及表达分析 | 第100-107页 |
| 6.1 材料与方法 | 第100-102页 |
| 6.1.1 材料 | 第100页 |
| 6.1.2 载体构建 | 第100-101页 |
| 6.1.3 T0和T1代转基因小麦检测方法 | 第101-102页 |
| 6.1.4 光合速率测定方法 | 第102页 |
| 6.2 结果与分析 | 第102-106页 |
| 6.2.1 p UBI::Ta SCL14 载体构建 | 第102-103页 |
| 6.2.2 T0和T1代转基因阳性小麦植株的特异性分子检测 | 第103-105页 |
| 6.2.3 转Ta SCL14 基因小麦的光合速率 | 第105-106页 |
| 6.3 结论与讨论 | 第106-107页 |
| 第七章 结论与创新点 | 第107-110页 |
| 7.1 结论 | 第107-109页 |
| 7.2 创新点 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-120页 |
| 缩略词 | 第120-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 作者简介 | 第124页 |
