| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、GDF-9、GDF-9B表达与超排卵卵巢低反应的关系 | 第19-42页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-27页 |
| 1.1.1 研究对象 | 第20页 |
| 1.1.2 超排卵方案及分组 | 第20页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第21页 |
| 1.1.5 实验步骤 | 第21-27页 |
| 1.1.6 统计学方法 | 第27页 |
| 1.2 结果 | 第27-34页 |
| 1.2.1 卵巢不同反应组患者一般情况和基础内分泌比较 | 第27页 |
| 1.2.2 卵巢不同反应组患者COH情况 | 第27-28页 |
| 1.2.3 颗粒细胞GDF-9、GDF-9B PCR产物琼脂糖凝胶电泳 | 第28-29页 |
| 1.2.4 卵巢不同反应组颗粒细胞GDF-9、GDF-9B表达情况 | 第29-31页 |
| 1.2.5 GDF-9、GDF-9B表达与超排卵获卵数的相关性 | 第31-34页 |
| 1.3 讨论 | 第34-41页 |
| 1.3.1 GDF-9、GDF-9B基因结构及在组织中的表达 | 第36-37页 |
| 1.3.2 GDF-9、GDF-9B在卵泡发育中的作用 | 第37-39页 |
| 1.3.3 GDF-9、GDF-9B与卵巢低反应的关系 | 第39-41页 |
| 1.4 小结 | 第41-42页 |
| 二、人GDF-9基因真核表达及纯化 | 第42-60页 |
| 2.1 对象和方法 | 第42-53页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第42-45页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第45-46页 |
| 2.1.3 实验步骤 | 第46-53页 |
| 2.2 结果 | 第53-58页 |
| 2.2.1 引入酶切位点的GDF-9 cDNA片段的获得 | 第53页 |
| 2.2.2 重组表达载体pcDNA3.1(+)/GDF-9的酶切鉴定 | 第53-54页 |
| 2.2.3 重组表达载体pcDNA3.1(+)/GDF-9的序列鉴定 | 第54-55页 |
| 2.2.4 G418抗性克隆筛选 | 第55-56页 |
| 2.2.5 纯化GDF-9蛋白的电泳 | 第56-57页 |
| 2.2.6 纯化GDF-9蛋白的Western-blotting检测 | 第57-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-59页 |
| 2.4 小结 | 第59-60页 |
| 三、重组蛋白GDF-9对小鼠超排卵的影响 | 第60-74页 |
| 3.1 对象和方法 | 第60-67页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第60页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第60-61页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第61页 |
| 3.1.4 实验步骤 | 第61-67页 |
| 3.1.5 统计学方法 | 第67页 |
| 3.2 结果 | 第67-70页 |
| 3.2.1 各组小鼠体重情况 | 第67-68页 |
| 3.2.2 不同方案对小鼠超排卵的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.3 小鼠血清雌二醇含量 | 第69页 |
| 3.2.4 各组体外受精率的比较 | 第69-70页 |
| 3.3 讨论 | 第70-73页 |
| 3.3.1 实验动物模型的选择 | 第70页 |
| 3.3.2 GDF-9在小鼠超排卵中的作用 | 第70-71页 |
| 3.3.3 GDF-9与FSH在卵泡发育中的关系 | 第71-72页 |
| 3.3.4 重组蛋白GDF-9的应用前景 | 第72-73页 |
| 3.4 小结 | 第73-74页 |
| 全文结论 | 第74-75页 |
| 论文创新点 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-82页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第82-83页 |
| 综述 生长分化因子-9和生长分化因子-9B基因的研究进展 | 第83-96页 |
| 综述参考文献 | 第90-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
