| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 缩略表 | 第12-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第1章 食蟹猴血浆中地高辛、安非他酮及其活性代谢物浓度的UPLC-MS/MS测定方法的建立 | 第16-27页 |
| 1.1 试验材料 | 第16-17页 |
| 1.1.1 仪器 | 第16-17页 |
| 1.1.2 药品与试剂 | 第17页 |
| 1.2 试剂的配制 | 第17-18页 |
| 1.2.1 储备液的配制 | 第17-18页 |
| 1.3 方法学验证 | 第18-26页 |
| 1.3.1 色谱条件与质谱条件 | 第18-19页 |
| 1.3.2 标准曲线以及质控样品配制 | 第19-20页 |
| 1.3.3 样品处理与测定 | 第20页 |
| 1.3.4 专属性 | 第20-21页 |
| 1.3.5 标准曲线 | 第21-22页 |
| 1.3.6 定量下限，精密度与准确度 | 第22-23页 |
| 1.3.7 提取回收率和基质效应 | 第23-24页 |
| 1.3.8 稳定性试验 | 第24-26页 |
| 1.4 讨论 | 第26-27页 |
| 第2章 食蟹猴尿液中地高辛、安非他酮及其活性代谢物浓度的UPLC-MS/MS测定方法的建立 | 第27-36页 |
| 2.1 试验材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 仪器 | 第27页 |
| 2.1.2 药品与试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 试剂的配制 | 第28页 |
| 2.2.1 储备液的配制 | 第28页 |
| 2.3 方法学验证 | 第28-35页 |
| 2.3.1 色谱条件与质谱条件 | 第28-29页 |
| 2.3.2 标准曲线以及质控样品配制 | 第29页 |
| 2.3.3 样品处理与测定 | 第29页 |
| 2.3.4 专属性 | 第29-31页 |
| 2.3.5 标准曲线 | 第31页 |
| 2.3.6 定量下限，精密度与准确度 | 第31-32页 |
| 2.3.7 提取回收率和基质效应 | 第32-33页 |
| 2.3.8 稳定性试验 | 第33-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-36页 |
| 第3章 安非他酮及其活性代谢物对食蟹猴体内地高辛药物代谢动力学影响 | 第36-46页 |
| 3.1 试验材料 | 第36页 |
| 3.1.1 动物 | 第36页 |
| 3.1.2 药品与试剂 | 第36页 |
| 3.2 食蟹猴体内药物代谢动力学研究 | 第36-38页 |
| 3.2.1 动物试验给药方案 | 第37-38页 |
| 3.2.2 血浆蛋白结合率和肌酐测定 | 第38页 |
| 3.3 药动学参数计算 | 第38页 |
| 3.4 统计方法 | 第38页 |
| 3.5 实验结果 | 第38-42页 |
| 3.5.1 BUP对食蟹猴静注DIG（0.1 mg/kg）药代动力学的影响 | 第38-40页 |
| 3.5.2 BUP对食蟹猴口服DIG（0.2 mg/kg）药代动力学的影响 | 第40-41页 |
| 3.5.3 食蟹猴静脉滴注BUP的药动学特征 | 第41-42页 |
| 3.5.4 血浆蛋白结合率和肌酐清除率 | 第42页 |
| 3.6 讨论 | 第42-46页 |
| 第4章 结论与展望 | 第46-47页 |
| 4.1 结论 | 第46页 |
| 4.2 展望 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第52-53页 |
| 综述 | 第53-61页 |
| 参考文献 | 第58-61页 |
