摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
缩写词 | 第11-12页 |
第一章 绪论 | 第12-27页 |
1.1 重金属污染现状与来源 | 第12-13页 |
1.1.1 重金属的污染现状 | 第12页 |
1.1.2 重金属污染的主要来源 | 第12-13页 |
1.2 Cd对植物的危害 | 第13-15页 |
1.2.1 Cd胁迫对离子吸收和运输的影响 | 第13-14页 |
1.2.2 Cd对细胞结构的影响 | 第14页 |
1.2.3 Cd对细胞内离子稳态和酶活性的影响 | 第14页 |
1.2.4 Cd诱导氧化损伤 | 第14-15页 |
1.3 重金属超积累植物的研究进展和解毒机制 | 第15-18页 |
1.3.1 超积累植物的研究 | 第15页 |
1.3.2 超积累植物的耐重金属机制 | 第15-18页 |
1.4 植物蛋白质组学研究进展 | 第18-22页 |
1.4.1 植物蛋白质组学技术的简介 | 第18-20页 |
1.4.2 重金属胁迫下植物蛋白质组学的研究 | 第20-22页 |
1.5 与重金属胁迫相关的基因的研究进展 | 第22-24页 |
1.5.1 ZIP基因家族 | 第23页 |
1.5.2 CDF基因家族 | 第23页 |
1.5.3 P1B-ATPase基因家族 | 第23-24页 |
1.6 试验材料白三叶的简介 | 第24-25页 |
1.6.1 白三叶形态学和生理学特点 | 第24页 |
1.6.2 白三叶抗逆性研究 | 第24-25页 |
1.7 研究的目的、意义以及技术路线图 | 第25-27页 |
1.7.1 试验目的意义 | 第25-26页 |
1.7.2 技术路线 | 第26-27页 |
第二章 Cd胁迫对白三叶根部抗氧化物酶系统的影响 | 第27-36页 |
2.1 试验材料 | 第27-28页 |
2.1.1 材料培养 | 第27页 |
2.1.2 Cd胁迫处理 | 第27-28页 |
2.2 试验方法 | 第28-30页 |
2.2.1 白三叶根部酶液提取 | 第28页 |
2.2.2 粗酶液蛋白质含量测定 | 第28页 |
2.2.3 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第28页 |
2.2.4 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第28-29页 |
2.2.5 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第29页 |
2.2.6 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定 | 第29页 |
2.2.7 谷胱甘肽还原酶(GR)活性的测定 | 第29-30页 |
2.3 数据统计 | 第30页 |
2.4 结果与分析 | 第30-33页 |
2.4.1 Cd胁迫对白三叶根部的SOD活性的影响 | 第30页 |
2.4.2 Cd胁迫对白三叶根部的POD活性的影响 | 第30-31页 |
2.4.3 Cd胁迫对白三叶根部的CAT活性的影响 | 第31页 |
2.4.4 Cd胁迫对白三叶根部的APX活性的影响 | 第31-32页 |
2.4.5 Cd胁迫对白三叶根部的GR活性的影响 | 第32-33页 |
2.4.6 Cd胁迫与白三叶根部的抗氧化酶之间的相关性分析 | 第33页 |
2.5 讨论 | 第33-35页 |
2.6 小结 | 第35-36页 |
第三章 Cd胁迫下白三叶根部的差异蛋白质组学研究 | 第36-57页 |
3.1 材料与方法 | 第36-40页 |
3.1.1 试验材料 | 第36页 |
3.1.2 试验药品与器材 | 第36-37页 |
3.1.3 试验方法 | 第37-40页 |
3.2 试验结果与分析 | 第40-51页 |
3.2.1 Cd胁迫下白三叶根部蛋白质差异表达图谱的分析 | 第40-42页 |
3.2.2 Cd胁迫下白三叶根部差异表达蛋白质功能分析 | 第42-51页 |
3.3 讨论 | 第51-56页 |
3.3.1 与碳水化合物和能量代谢相关的蛋白 | 第51-53页 |
3.3.2 与植物胁迫和防御过程相关的蛋白 | 第53-54页 |
3.3.3 与蛋白质合成和降解过程相关的蛋白 | 第54-55页 |
3.3.4 与细胞结构相关的蛋白 | 第55页 |
3.3.5 与膜和运输相关的蛋白 | 第55-56页 |
3.4 小结 | 第56-57页 |
第四章 结论与展望 | 第57-59页 |
4.1 结论 | 第57-58页 |
4.2 展望 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-75页 |
攻读硕士期间所发表的学术论文 | 第75-77页 |
致谢 | 第77页 |