| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 主要缩略词表 | 第14-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-31页 |
| 1.1 结直肠癌的免疫研究进展 | 第15-25页 |
| 1.1.1 前言 | 第15-17页 |
| 1.1.2 CRC肿瘤微环境中的免疫细胞 | 第17-24页 |
| 1.1.3 CRC肿瘤微环境中的免疫活性因子 | 第24-25页 |
| 1.1.4 小结 | 第25页 |
| 1.2 CD169~+单核巨噬细胞的研究进展 | 第25-31页 |
| 1.2.1 前言 | 第25-26页 |
| 1.2.2 CD169~+单核巨噬细胞与感染性疾病 | 第26-27页 |
| 1.2.3 CD169~+单核巨噬细胞与自身免疫性疾病 | 第27页 |
| 1.2.4 CD169~+单核巨噬细胞与肿瘤性疾病 | 第27-29页 |
| 1.2.5 小结 | 第29-31页 |
| 第2章 肠粘膜固有层单个核细胞的提取及分析 | 第31-51页 |
| 2.1 前言 | 第31-34页 |
| 2.2 料和方法 | 第34-40页 |
| 2.2.1 研究对象 | 第34页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第34-35页 |
| 2.2.3 主要实验试剂 | 第35-36页 |
| 2.2.4 标本采集 | 第36页 |
| 2.2.5 外周血单个核细胞的提取（PBMC） | 第36页 |
| 2.2.6 探索最佳酶消化时间和酶浓度提取LPMC | 第36-37页 |
| 2.2.7 LPMC的提取过程 | 第37-39页 |
| 2.2.8 提取的PBMC和LPMC细胞计数 | 第39页 |
| 2.2.9 提取的PBMC和LPMC细胞活力检测 | 第39页 |
| 2.2.10 流式细胞术检测提取的PBMC和LPMC抗原表位表达情况 | 第39-40页 |
| 2.2.11 统计学分析 | 第40页 |
| 2.3 实验结果 | 第40-45页 |
| 2.3.1 探究不同消化酶液浓度下提取LPMC细胞的最佳消化时间 | 第40-41页 |
| 2.3.2 探究提取LPMC的最佳酶工作浓度 | 第41-42页 |
| 2.3.3 提取的LPMC细胞荧光染色检测 | 第42-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-49页 |
| 2.4.1 LPMC细胞提取方法的选择与评价 | 第46-48页 |
| 2.4.2 LPMC细胞提取过程要点和经验总结 | 第48-49页 |
| 2.5 结论 | 第49-51页 |
| 第3章 CD169~+肿瘤相关巨噬细胞在结直肠癌中表达及功能研究 | 第51-85页 |
| 3.1 前言 | 第51-53页 |
| 3.2 材料和方法 | 第53-62页 |
| 3.2.1 研究对象、实验仪器和实验试剂 | 第53-57页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第57-62页 |
| 3.3 结果 | 第62-80页 |
| 3.3.1 CD169在CRC患者外周血单核细胞和肿瘤组织内TAM细胞的表达 | 第62-66页 |
| 3.3.2 CRC患者外周循环和肿瘤组织内CD14~+CD169~+单核巨噬细胞亚群分析 | 第66-69页 |
| 3.3.3 体外培养刺激探究CD14~+CD169~+单核巨噬细胞功能 | 第69-73页 |
| 3.3.4 免疫荧光检测CD169在CRC组织内表达 | 第73-75页 |
| 3.3.5 CRC肿瘤组织内CD169、IL-4、IL-10、IL-12 和IL-13mRNA的检测和相关性分析 | 第75-77页 |
| 3.3.6 探究CD169在CRC表达与肿瘤分期的关系 | 第77-78页 |
| 3.3.7 CRC患者血清癌胚抗原（CEA）水平与外周血和肿瘤中心CD14~+CD169~+单核巨噬细胞水平相关性分析 | 第78-79页 |
| 3.3.8 晚期术后化疗患者循环CD14~+CD169~+单核巨噬细胞的检测 | 第79-80页 |
| 3.4 讨论 | 第80-83页 |
| 3.5 结论 | 第83-85页 |
| 第4章 创新点 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-105页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
