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核桃抗氧化肽的制备及其分离纯化

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 绪论第9-17页
    1.1 核桃第9页
    1.2 核桃多肽的研究进展第9-10页
    1.3 生物活性肽的研究进展第10-16页
        1.3.1 活性肽的种类第11-13页
        1.3.2 生物活性肽的制备方法第13-14页
        1.3.3 活性肽分离纯化的方法第14-15页
        1.3.4 活性肽的氨基酸序列测定方法第15-16页
        1.3.5 活性肽的应用前景第16页
    1.4 本论文研究的目的及意义第16页
    1.5 本论文的研究内容第16-17页
第二章 核桃蛋白抗氧化肽的制备第17-29页
    2.1 引言第17页
    2.2 试验材料、试剂与仪器第17-18页
        2.2.1 试验材料第17页
        2.2.2 试验试剂第17-18页
        2.2.3 试验仪器第18页
    2.3 试验方法第18-21页
        2.3.1 核桃蛋白的制备第18页
        2.3.2 蛋白酶的活力测定第18页
        2.3.3 DPPH清除率的测定第18-19页
        2.3.4 单因素试验第19页
        2.3.5 正交优化试验第19-20页
        2.3.6 核桃蛋白酶解液的超滤分离第20页
        2.3.7 核桃类蛋白产物的蛋白质含量第20页
        2.3.8 核桃蛋白及多肽的氨基酸分析第20-21页
    2.4 实验结果与讨论第21-28页
        2.4.1 酶活力的测定结果第21-22页
        2.4.2 酶解法提取核桃抗氧化肽的单因素实验第22-25页
        2.4.3 采用正交优化核桃抗氧化肽的提取工艺第25-26页
        2.4.4 核桃蛋白酶解液的处理第26-27页
        2.4.5 核桃类蛋白产物的蛋白质含量第27页
        2.4.6 核桃蛋白及多肽粗品的氨基酸分析第27-28页
    2.5 本章小结第28-29页
第三章 小分子量多肽测定方法的建立第29-40页
    3.1 引言第29页
    3.2 试验材料、试剂与设备第29-30页
        3.2.1 试验材料第29页
        3.2.2 试验试剂第29-30页
        3.2.3 试验仪器第30页
    3.3 试验方法第30-34页
        3.3.1 考马斯亮蓝法第30-31页
        3.3.2 双缩脲法第31-32页
        3.3.3 紫外分光度法测定低浓度小分子量多肽第32-34页
    3.4 结果与讨论第34-38页
        3.4.1 考马斯亮蓝法第34-35页
        3.4.2 双缩脲法第35-36页
        3.4.3 紫外分光光度法测定低浓度小分子量多肽第36-38页
    3.5 本章小结第38-40页
第四章 核桃蛋白抗氧化肽的分离纯化第40-60页
    4.1 引言第40页
    4.2 试验材料、试剂与设备第40-41页
        4.2.1 试验材料第40页
        4.2.2 试验试剂第40-41页
        4.2.3 试验仪器第41页
    4.3 试验方法第41-45页
        4.3.1 阴离子交换柱第41-42页
        4.3.2 阳离子交换柱第42-43页
        4.3.3 G25凝胶柱第43-44页
        4.3.4 最佳分离条件下对分离组分的选择第44页
        4.3.5 高活性抗氧化肽的氨基酸分析及肽段分析第44-45页
    4.4 结果与讨论第45-58页
        4.4.1 阴离子柱分离纯化条件的确定第45-49页
        4.4.2 阳离子柱分离纯化条件的确定第49-53页
        4.4.3 G25凝胶柱分离纯化条件的确定第53-57页
        4.4.4 高抗氧化活性核桃抗氧化肽的氨基酸分析第57-58页
    4.5 本章小结第58-60页
第五章 结论与展望第60-62页
    5.1 结论第60-61页
    5.2 创新点第61页
    5.3 展望第61-62页
致谢第62-63页
参考文献第63-66页
附录第66-67页
图版第67-69页
声明第69-70页

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