前言 | 第4-5页 |
中文摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
英文缩写词表 | 第12-18页 |
第1章 文献综述 | 第18-33页 |
1.1 脓毒症相关的心肌功能障碍 | 第18-28页 |
1.1.1 脓毒症的流行病学研究 | 第19-20页 |
1.1.2 脓毒症心肌功能障碍的病理生理学机制研究 | 第20-23页 |
1.1.2.1 脓毒症缺血与心脏功能障碍 | 第20-21页 |
1.1.2.2 脓毒症的心脏抑制 | 第21-22页 |
1.1.2.3 脓毒症心脏功能障碍时的炎症反应 | 第22-23页 |
1.1.2.4 脓毒症引起的线粒体功能障碍 | 第23页 |
1.1.3 脓毒症心肌功能障碍的生物学标志物 | 第23-25页 |
1.1.3.1 脓毒症心肌功能障碍心脏超声指标 | 第24页 |
1.1.3.2 脓毒症心肌功能障碍的生化指标 | 第24-25页 |
1.1.4 脓毒症心肌功能障碍的治疗 | 第25-27页 |
1.1.5 脓毒症的预后 | 第27页 |
1.1.6 结论 | 第27-28页 |
1.2 人参皂苷改善心功能的作用及初步机制探讨 | 第28-33页 |
1.2.1 人参皂苷改善心功能的作用 | 第28-30页 |
1.2.1.1 人参皂苷可保护心肌损伤,减少凋亡的发生 | 第28-29页 |
1.2.1.2 人参皂苷对肾素血管紧张素系统的影响 | 第29页 |
1.2.1.3 人参皂苷抑制相关炎症因子 | 第29-30页 |
1.2.2 人参在临床中的应用 | 第30页 |
1.2.3 本课题组对人参二醇组皂苷的研究 | 第30-33页 |
第2章 材料与方法 | 第33-40页 |
2.1 实验材料及设备 | 第33-35页 |
2.1.1 实验材料 | 第33页 |
2.1.1.1 实验动物 | 第33页 |
2.1.1.2 实验用药 | 第33页 |
2.1.2 实验试剂 | 第33-35页 |
2.1.2.1 蛋白质免疫印迹法相关试剂 | 第33-34页 |
2.1.2.2 生化指标检测试剂盒 | 第34页 |
2.1.2.3 ELISA试剂盒 | 第34页 |
2.1.2.4 其他相关试剂 | 第34页 |
2.1.2.5 主要试剂的配制方法 | 第34-35页 |
2.1.3 实验设备和仪器 | 第35页 |
2.2 实验方法 | 第35-39页 |
2.2.1 脓毒症心肌病小鼠动物模型的构建 | 第35-36页 |
2.2.2 超声心动心功能检测 | 第36页 |
2.2.3 小鼠心脏形态学观察与组织学定量分析 | 第36页 |
2.2.4 生化指标和炎性因子检测 | 第36-37页 |
2.2.5 检测心肌组织中炎性因子RNA含量 | 第37页 |
2.2.5.1 组织RNA提取 | 第37页 |
2.2.5.2 RNA逆转录为c DNA | 第37页 |
2.2.5.3 c DNA产物PCR扩增,琼脂糖凝胶电泳 | 第37页 |
2.2.6 Western blot检测全心和心肌细胞核蛋白表达 | 第37-39页 |
2.2.6.1 心肌组织总蛋白和细胞核蛋白的提取 | 第37页 |
2.2.6.2 测定蛋白浓度 | 第37-38页 |
2.2.6.3 SDS-PAGE电泳所需凝胶的配制 | 第38页 |
2.2.6.4 SDS-PAGE电泳及转膜 | 第38页 |
2.2.6.5 牛奶封闭及抗体孵育 | 第38-39页 |
2.2.6.6 ECL显色 | 第39页 |
2.3 统计分析 | 第39-40页 |
第3章 实验结果 | 第40-49页 |
3.1 PDS可改善LPS诱导的急性心肌损伤小鼠的心功能 | 第40-42页 |
3.1.1 PDS对LPS诱导的急性心肌损伤小鼠心脏体积和重量的影响 | 第40-41页 |
3.1.2 PDS可改善LPS诱导的急性心肌损伤小鼠的心脏收缩功能 | 第41-42页 |
3.2 PDS可改善LPS诱导的急性心肌损伤小鼠心脏组织形态学变化 | 第42-43页 |
3.3 PDS可降低LPS诱导的心肌损伤小鼠血清CK、LDH水平 | 第43-44页 |
3.4 PDS可降低LPS诱导的急性心肌损伤小鼠TNF-α,IL-6 的升高 | 第44-45页 |
3.5 PDS可降低LPS诱导的急性心肌损伤小鼠心脏组织凋亡相关蛋白表达 | 第45-46页 |
3.6 PDS可抑制LPS诱导的急性心肌损伤小鼠心脏NF-?B信号通路的激活 | 第46-48页 |
3.7 PDS可减少LPS诱导的急性心肌损伤小鼠心肌细胞的氧化损伤 | 第48-49页 |
第4章 讨论 | 第49-53页 |
第5章 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-61页 |
致谢 | 第61页 |