| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 基因转染载体 | 第11-15页 |
| 1.2.1 脂质体 | 第12-13页 |
| 1.2.2 聚合物 | 第13-15页 |
| 1.2.3 纳米无机物 | 第15页 |
| 1.3 生物活性玻璃 | 第15-18页 |
| 1.3.1 熔融法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 溶胶-凝胶法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 有机模板溶胶-凝胶法 | 第17-18页 |
| 1.4 壳聚糖 | 第18-21页 |
| 1.4.1 来源及其性质 | 第18-19页 |
| 1.4.2 化学改性 | 第19-21页 |
| 1.4.3 壳聚糖转染路径 | 第21页 |
| 1.5 基因活性物质 | 第21-22页 |
| 1.6 课题意义、路线 | 第22-25页 |
| 1.6.1 课题的研究意义 | 第22-23页 |
| 1.6.2 课题的研究路线 | 第23-25页 |
| 第二章 生物玻璃/双亲性壳聚糖及其成骨生长肽基因制备 | 第25-37页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 材料和设备 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.3 材料表征 | 第27-29页 |
| 2.3.1 生物玻璃的性能表征 | 第27页 |
| 2.3.2 双亲性壳聚糖的性能表征 | 第27-28页 |
| 2.3.3 重组质粒 | 第28-29页 |
| 2.4 结果讨论 | 第29-36页 |
| 2.4.1 生物玻璃 | 第29-30页 |
| 2.4.2 双亲性壳聚糖 | 第30-36页 |
| 2.4.3 重组质粒 | 第36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 生物玻璃/双亲性壳聚糖胞外介导基因的相互作用 | 第37-47页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第37-38页 |
| 3.3 实验测试表征方法 | 第38-40页 |
| 3.3.1 复合物与OGP质粒复合 | 第38-39页 |
| 3.3.2 形貌表征 | 第39页 |
| 3.3.3 凝胶电泳实验 | 第39页 |
| 3.3.4 Zeta电位和尺寸 | 第39页 |
| 3.3.5 DNaseⅠ保护实验 | 第39-40页 |
| 3.3.6 体外释放 | 第40页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第40-46页 |
| 3.4.1 形貌表征 | 第40-41页 |
| 3.4.2 凝胶电泳 | 第41-44页 |
| 3.4.3 Zeta电位和尺寸 | 第44-45页 |
| 3.4.4 DNase I保护实验 | 第45页 |
| 3.4.5 pOGP的胞外释放 | 第45-46页 |
| 3.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 生物玻璃/双亲性壳聚糖介导基因胞内表达 | 第47-58页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第47-48页 |
| 4.3 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.3.1 细胞毒性 | 第48-49页 |
| 4.3.2 细胞吸收率 | 第49页 |
| 4.3.3 细胞内转染 | 第49页 |
| 4.3.4 离子释放 | 第49-50页 |
| 4.3.5 数据统计 | 第50页 |
| 4.4 结果讨论 | 第50-57页 |
| 4.4.1 细胞毒性 | 第50-51页 |
| 4.4.2 细胞吸收 | 第51页 |
| 4.4.3 细胞转染 | 第51-53页 |
| 4.4.4 细胞转染机理初步探讨 | 第53-57页 |
| 4.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| Ⅳ-2答辩委员会对论文的评定意见 | 第69页 |