缩写词 | 第10-11页 |
摘要 | 第11-16页 |
Abstract | 第16-22页 |
第一章 引言 | 第23-32页 |
1 植物多肽的研究进展 | 第24-27页 |
1.1 植物多肽在农业生产中的应用 | 第24-25页 |
1.2 pri-miRNA编码miPEPs的原理 | 第25-26页 |
1.3 miPEPs在植物生长发育中的调节作用 | 第26-27页 |
1.4 短肽起始密码子的特征 | 第27页 |
2 植物miRNA研究进展 | 第27-30页 |
2.1 miRNA与植物体胚发生 | 第27-28页 |
2.2 miRNA在龙眼体胚中的研究 | 第28-29页 |
2.3 miRNA与植物形态建成 | 第29页 |
2.4 miR319在植物中的研究进展 | 第29-30页 |
3 本研究的意义和主要内容 | 第30-32页 |
3.1 研究意义 | 第30-31页 |
3.2 研究内容 | 第31-32页 |
第二章 龙眼pri-miRNA全长序列的获得及生物信息学分析 | 第32-43页 |
1 材料与方法 | 第32-38页 |
1.1 材料 | 第32页 |
1.2 方法 | 第32-38页 |
1.2.1 总RNA提取及cDNA反转录 | 第32-33页 |
1.2.2 16个pri- miRNA的克隆 | 第33-37页 |
1.2.3 PCR扩增程序及测序 | 第37页 |
1.2.4 生物信息学分析 | 第37-38页 |
1.2.5 pri-miRNA序列转录起始位点的确认 | 第38页 |
2 结果与分析 | 第38-41页 |
2.1 龙眼体胚中16个pri-miRNA序列的克隆 | 第38页 |
2.2 龙眼pri-miRNA内含子序列及转录起始位点的确定 | 第38-39页 |
2.3 激素响应元件分析 | 第39-41页 |
3 讨论 | 第41-43页 |
3.1 龙眼愈伤组织16个pri-miRNA克隆 | 第41页 |
3.2 龙眼初级体转录起始位点的确定 | 第41页 |
3.3 龙眼18个pri-miRNA启动子潜在功能分析 | 第41-43页 |
第三章 龙眼19个pre-miRNA的表达模式分析 | 第43-82页 |
第一节 19个候选pre-miRNA在龙眼体胚发生过程中的差异表达 | 第43-57页 |
1 材料与方法 | 第43-45页 |
1.1 材料 | 第44页 |
1.2 方法 | 第44-45页 |
1.2.1 RNA提取及cDNA逆转录 | 第44页 |
1.2.2 19个pre-miRNA在'红核子'龙眼体胚不同发育阶段的表达分析 | 第44-45页 |
2 结果与分析 | 第45-56页 |
2.1 pre-miR156家族在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第46页 |
2.2 pre-miR160a-scaffold209在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第46页 |
2.3 pre-miR166-scaffold338在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第46-47页 |
2.4 pre-miR167d-scaffold53在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第47页 |
2.5 pre-miR168a-scaffold2621在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第47-48页 |
2.6 pre-miR170-scaffold1266在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第48-49页 |
2.7 pre-miR390家族在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第49-50页 |
2.8 pre-miR319a-scaffold517在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第50页 |
2.9 pre-miR393h-scaffold978在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第50-51页 |
2.10 pre-miR394a-scaffold3884在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第51页 |
2.11 pre-miR395a-scaffold6在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第51-52页 |
2.12 pre-miR396a-scaffold38在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第52-53页 |
2.13 pre-miR397-scaffold21在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第53页 |
2.14 pre-miR398b-scaffold58在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第53-54页 |
2.15 pre-miR482a-scaffold26在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第54页 |
2.16 pre-miR2118a-scaffold26在龙眼体胚不同发育阶段的表达模式分析 | 第54-55页 |
2.17 17个pre-miRNA在龙眼体胚不同发育阶段分析 | 第55-56页 |
3 讨论 | 第56-57页 |
3.1 龙眼体胚生长发育可能由多个miRNA同时调控 | 第56页 |
3.2 龙眼同一家族中pre-miRNA表达模式差异分析 | 第56-57页 |
第二节 19个pre-miRNA在'红核子'龙眼不同组织器官中的差异表达 | 第57-70页 |
1 材料与方法 | 第58-59页 |
1.1 试验材料 | 第58页 |
1.2 试验方法 | 第58-59页 |
1.2.1 RNA的提取及cDNA逆转录 | 第58页 |
1.2.2 19个pre-miRNA在'红核子'龙眼不同器官的表达分析 | 第58-59页 |
2 结果与分析 | 第59-69页 |
2.1 在龙眼不同器官中未检测出pre-miRNA分析 | 第59页 |
2.2 pre-miR160a-scaffold209在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第59页 |
2.3 pre-miR166-scaffold338在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第59-60页 |
2.4 pre-miR167d-scaffold53在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第60-61页 |
2.5 pre-miR168a-scaffold2621在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第61页 |
2.6 pre-miR170-scaffold1266在龙眼不同组织器官的表达模式分析 | 第61-62页 |
2.7 pre-miR171f-scaffold537在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第62-63页 |
2.8 pre-miR390家族在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第63-64页 |
2.9 pre-miR319a-scaffold517在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第64页 |
2.10 pre-miR393h-scaffold978在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第64-65页 |
2.11 pre-miR394a-scaffold3884在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第65-66页 |
2.12 pre-miR395a-scaffold6在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第66页 |
2.13 pre-miR396a-scaffold38在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第66-67页 |
2.14 pre-miR397-scaffold21在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第67-68页 |
2.15 pre-miR482a-scaffold26在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第68页 |
2.16 pre-miR2118a-scaffold26在龙眼不同器官的表达模式分析 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-70页 |
第三节 龙眼19个候选pre- miRNA在激素胁迫下的表达模式 | 第70-82页 |
1 材料与方法 | 第71页 |
1.1 材料 | 第71页 |
1.2 方法 | 第71页 |
2 结果与分析 | 第71-80页 |
2.1 pre-miR160a-scaffold209在不同激素的表达模式 | 第72页 |
2.2 pre-miR166-scaffold338在不同激素的表达模式 | 第72-73页 |
2.3 pre-miR167d-scaffold53在不同激素的表达模式 | 第73页 |
2.4 pre-miR168a-scaffold2621在不同激素的表达模式 | 第73-74页 |
2.5 pre-miR170-scaffold1266在不同激素的表达模式 | 第74-75页 |
2.6 pre-miR171f-scaffold537在不同激素的表达模式 | 第75页 |
2.7 pre-miR390a-scaffold73和pre-miR390a-scaffold24在不同激素的表达模式 | 第75-76页 |
2.8 pre-miR319a-scaffold517在不同激素的表达模式 | 第76-77页 |
2.9 pre-miR394a-scaffold3884在不同激素的表达模式 | 第77页 |
2.10 pre-miR395a-scaffold6在不同激素的表达模式 | 第77-78页 |
2.11 pre-miR396a-scaffold38在不同激素的表达模式 | 第78-79页 |
2.12 pre-miR482a-scaffold26在不同激素的表达模式 | 第79页 |
2.13 pre-miR2118a-scaffold26在不同激素的表达模式 | 第79-80页 |
3 讨论 | 第80-82页 |
第四章 miPEP319在龙眼体胚发生过程中对miR319家族成员表达的研究 | 第82-92页 |
第一节 不同转录起始位点miPEP319对龙眼体胚中miR319家族成员的影响 | 第82-87页 |
1 材料与方法 | 第83-84页 |
1.1 试验材料 | 第83页 |
1.2 方法 | 第83-84页 |
1.2.1 miPEP319对龙眼体胚发生影响处理方法 | 第83-84页 |
1.2.2 miPEP319对龙眼miR319家族成员表达模式分析 | 第84页 |
2 结果与分析 | 第84-87页 |
2.1 miPEP319对龙眼miR319家族成员中miR319表达模式分析 | 第84-85页 |
2.2 miPEP319对龙眼miR319家族成员中miR319b~*表达模式分析 | 第85-86页 |
2.3 miPEP319对龙眼miR319家族成员中miR319c表达模式分析 | 第86-87页 |
3 讨论 | 第87页 |
第二节 miPEP319-2对龙眼体胚中miR319家族成员的影响 | 第87-92页 |
1 材料与方法 | 第88-89页 |
1.1 试验材料 | 第88-89页 |
1.1.1 不同浓度miPEP319-2处理龙眼胚性愈伤组织的获得 | 第88页 |
1.1.2 不同时间miPEP319-2处理龙眼胚性愈伤组织的获得 | 第88页 |
1.1.3 突变肽及miPEP319-2处理龙眼愈伤组织的方法 | 第88-89页 |
1.2 方法 | 第89页 |
2 结果与分析 | 第89-91页 |
2.1 不同浓度miPEP319-2处理下龙眼miR319家族成员表达模式 | 第89页 |
2.2 不同时间处理下龙眼miR319家族成员表达模式 | 第89-90页 |
2.3 不同氨基酸序列miPEP319-2对龙眼miR319家族成员表达模式分析 | 第90-91页 |
3 讨论 | 第91-92页 |
3.1 外源miPEP319-2对龙眼miR319家族成员影响差异 | 第91页 |
3.2 miPEP319-2正调控miR319家族成员表达 | 第91-92页 |
第五章 miPEP319调控龙眼体胚发生作用研究 | 第92-105页 |
第一节 miPEP3 19-2在龙眼体胚发生早期的影响 | 第92-99页 |
1 材料与方法 | 第93-94页 |
1.1 材料 | 第93页 |
1.2 方法 | 第93-94页 |
1.2.1 miPEP319-2处理对龙眼体胚发生早期miR319家族成员表达影响 | 第93页 |
1.2.2 miPEP319-2处理对龙眼体胚发生早期pre-miR319及靶标影响 | 第93-94页 |
2 结果与分析 | 第94-98页 |
2.1 miPEP319-2对龙眼miR319家族成员的影响 | 第94-95页 |
2.2 miPEP319-2对龙眼pre-miR319家族表达模式分析 | 第95-96页 |
2.3 miPEP319-2处理对龙眼miR319靶标表达模式分析 | 第96-97页 |
2.4 miPEP319-2处理对龙眼体胚发育早期形态影响 | 第97-98页 |
3 讨论 | 第98-99页 |
第二节 miPEP319不同转录起始位点对龙眼体胚发生早期功能影响 | 第99-105页 |
1 材料与方法 | 第100页 |
1.1 材料 | 第100页 |
1.2 方法 | 第100页 |
2 结果与分析 | 第100-103页 |
2.1 不同转录起始位点miPEP319对miR319家族成员表达分析 | 第100-101页 |
2.2 不同转录起始位点miPEP319对龙眼pre-miR319家族表达模式分析 | 第101-102页 |
2.3 不同转录起始位点miPEP319对龙眼miR319靶标表达模式分析 | 第102-103页 |
3 讨论 | 第103-105页 |
3.1 miPEP起始密码子的多样性及其功能的多样性 | 第103-104页 |
3.2 龙眼pri-miR319编码的miPEP活性及其应用前景 | 第104-105页 |
第六章 小结与展望 | 第105-108页 |
参考文献 | 第108-118页 |
在硕士期间发表论文情况 | 第118-119页 |
致谢 | 第119-120页 |
附录 | 第120-146页 |