| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-36页 |
| 1.1 葡萄灰霉病研究现状 | 第15页 |
| 1.2 灰霉菌的生活史和侵染特征 | 第15-16页 |
| 1.3 葡萄抗灰霉病种质资源的鉴定和筛选 | 第16-17页 |
| 1.4 植物抗灰霉病机理研究进展 | 第17-32页 |
| 1.4.1 植物与腐生菌互作的分子机制 | 第17-18页 |
| 1.4.2 细胞表面结构对植物与灰霉菌互作效果的影响 | 第18-22页 |
| 1.4.3 植物与灰霉菌互作的复杂调控网络 | 第22-27页 |
| 1.4.4 植物与灰霉菌互作中的ROS和HR | 第27-28页 |
| 1.4.5 植物与灰霉菌互作中的代谢过程 | 第28-30页 |
| 1.4.6 植物与灰霉菌互作的转录组水平上的研究进展 | 第30-32页 |
| 1.5 葡萄与灰霉菌互作的研究进展 | 第32-34页 |
| 1.5.1 葡萄与灰霉菌互作过程对结构组分的影响 | 第32-33页 |
| 1.5.2 葡萄对灰霉菌的诱导抗性 | 第33-34页 |
| 1.5.3 葡萄与灰霉菌互作的分子机制 | 第34页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第34-36页 |
| 第二章 中国野生葡萄种质叶片抗灰霉病水平鉴定 | 第36-49页 |
| 2.1 试验材料 | 第36-37页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第36页 |
| 2.1.2 病原菌材料 | 第36页 |
| 2.1.3 主要仪器和试剂 | 第36-37页 |
| 2.2 试验内容和方法 | 第37-38页 |
| 2.2.1 灰霉菌的分离鉴定 | 第37页 |
| 2.2.2 最佳接种溶液和接种浓度的确定 | 第37页 |
| 2.2.3 接种试验 | 第37-38页 |
| 2.2.4 病情严重度的评价定级 | 第38页 |
| 2.2.5 灰霉菌侵染结果的微观统计 | 第38页 |
| 2.2.6 数据统计分析 | 第38页 |
| 2.3 结果与分析 | 第38-48页 |
| 2.3.1 最佳接种溶液和接种浓度的确定 | 第38-40页 |
| 2.3.2 中国野生葡萄种质叶片抗灰霉病水平鉴定 | 第40-48页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第48-49页 |
| 第三章 中国野生葡萄种质叶片与灰霉菌互作的组织学研究 | 第49-54页 |
| 3.1 试验材料 | 第49页 |
| 3.1.1 植物和灰霉菌材料 | 第49页 |
| 3.1.2 主要仪器和试剂 | 第49页 |
| 3.2 试验内容和方法 | 第49-50页 |
| 3.2.1 接种试验 | 第49页 |
| 3.2.2 灰霉菌侵染过程的微观统计 | 第49-50页 |
| 3.2.3 SEM观察灰霉菌的侵染过程 | 第50页 |
| 3.2.4 数据统计分析 | 第50页 |
| 3.3 结果与分析 | 第50-53页 |
| 3.3.1 中国野生葡萄种质叶片上灰霉病病情发展 | 第50-51页 |
| 3.3.2 中国野生葡萄种质叶片上灰霉菌的生长发育 | 第51-53页 |
| 3.4 讨论与小结 | 第53-54页 |
| 第四章 中国野生葡萄种质叶片抗灰霉菌的活性氧响应研究 | 第54-66页 |
| 4.1 试验材料 | 第54-55页 |
| 4.1.1 植物和灰霉菌材料 | 第54页 |
| 4.1.2 主要仪器和试剂 | 第54-55页 |
| 4.2 试验内容和方法 | 第55-56页 |
| 4.2.1 接种试验 | 第55页 |
| 4.2.2 H_2O_2组织化学染色 | 第55页 |
| 4.2.3 O~(2-)组织化学染色 | 第55页 |
| 4.2.4 DAB和NBT染色情况的微观统计 | 第55页 |
| 4.2.5 酶活性测定 | 第55-56页 |
| 4.2.6 数据统计分析 | 第56页 |
| 4.3 结果与分析 | 第56-62页 |
| 4.3.1 中国野生葡萄种质叶片与灰霉菌互作时H_2O_2的积累 | 第56-58页 |
| 4.3.2 不同抗性葡萄与灰霉菌互作时的O~(2-) | 第58-60页 |
| 4.3.3 受灰霉菌诱导后中国野生葡萄种质叶片中抗氧化酶活性变化 | 第60-62页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第62-66页 |
| 第五章 中国野生葡萄种质叶片与灰霉菌互作的分子机制研究 | 第66-109页 |
| 5.1 试验材料 | 第66-67页 |
| 5.1.1 植物和灰霉菌材料 | 第66页 |
| 5.1.2 主要仪器和试剂 | 第66-67页 |
| 5.2 试验内容和方法 | 第67-69页 |
| 5.2.1 接种试验 | 第67页 |
| 5.2.2 SEM观察灰霉菌的侵染过程 | 第67页 |
| 5.2.3 灰霉菌的侵染过程的宏观微观统计 | 第67页 |
| 5.2.4 RNA的提取制备 | 第67页 |
| 5.2.5 转录组文库构建及测序 | 第67页 |
| 5.2.6 差异表达基因的鉴定和比较 | 第67页 |
| 5.2.7 样本间关系的分析 | 第67-68页 |
| 5.2.8 差异表达基因的功能分类与富集 | 第68页 |
| 5.2.9 基因表达表达模式聚类分析 | 第68页 |
| 5.2.10 WGCNA分析 | 第68-69页 |
| 5.3 结果与分析 | 第69-100页 |
| 5.3.1 接种灰霉菌后的表现 | 第69页 |
| 5.3.2 RNA-Seq数据分析 | 第69-73页 |
| 5.3.3 差异表达基因表达模式的聚类 | 第73-77页 |
| 5.3.4 差异表达基因功能富集分析 | 第77-83页 |
| 5.3.5 差异表达基因的代谢通路富集分析 | 第83-85页 |
| 5.3.6 相关生物学过程中重要响应基因的分析 | 第85-97页 |
| 5.3.7 本底表达差异分析 | 第97-100页 |
| 5.4 讨论与小结 | 第100-109页 |
| 5.4.1 差异表达基因随时间的变化 | 第100页 |
| 5.4.2 灰霉菌引发葡萄叶片中多种信号路径的响应 | 第100-102页 |
| 5.4.3 灰霉菌侵染早期引起抗病中国野生葡萄叶片结构的改变 | 第102-103页 |
| 5.4.4 灰霉菌引发葡萄叶片C/N代谢重组 | 第103-104页 |
| 5.4.5 灰霉菌导致感病葡萄叶片细胞稳态失衡和细胞衰老死亡 | 第104-106页 |
| 5.4.6 葡萄叶片基因的本底表达水平决定了其基础抗性水平 | 第106-109页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第109-111页 |
| 6.1 结论 | 第109-110页 |
| 6.2 创新点 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-131页 |
| 附录 | 第131-145页 |
| 缩略词 | 第145-147页 |
| 致谢 | 第147-148页 |
| 作者简介 | 第148页 |
