| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 缩略词 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-27页 |
| ·线粒体的膜系统 | 第10-11页 |
| ·VDAC的结构和性质 | 第11-17页 |
| ·VDAC的鉴定和电生理性质 | 第11-13页 |
| ·VDAC的序列特征 | 第13-14页 |
| ·VDAC的结构 | 第14-17页 |
| ·VDAC的功能 | 第17-26页 |
| ·VDAC蛋白亚细胞定位 | 第17-18页 |
| ·VDAC参与线粒体的功能调控 | 第18-19页 |
| ·VDAC参与线粒体介导的细胞凋亡 | 第19-20页 |
| ·植物VDAC的功能 | 第20-26页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第26-27页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第27-41页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·植物材料 | 第27页 |
| ·菌株材料 | 第27页 |
| ·主要载体 | 第27页 |
| ·主要酶和试剂 | 第27-28页 |
| ·实验仪器 | 第28页 |
| ·培养基及常用溶液 | 第28-30页 |
| ·培养基配制 | 第28-29页 |
| ·常用溶液配制 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-41页 |
| ·拟南芥的种植与培养 | 第30页 |
| ·拟南芥基因组DNA提取 | 第30页 |
| ·拟南芥总RNA提取 | 第30-31页 |
| ·反转录 | 第31页 |
| ·实时荧光定量聚合酶链式反应(Real-time PCR) | 第31页 |
| ·大肠杆菌质粒DNA提取 | 第31-32页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞制备以及质粒或连接产物转化 | 第32页 |
| ·农杆菌感受态细胞制备和转化 | 第32-33页 |
| ·农杆菌介导的外源基因转化拟南芥植株 | 第33-34页 |
| ·酵母双杂交实验 | 第34-35页 |
| ·荧光素酶互补成像实验 | 第35页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第35-36页 |
| ·苯胺蓝染色观察体内花粉管生长 | 第36页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察雌配子体发育 | 第36页 |
| ·拟南芥花粉的亚历山大染色 | 第36-37页 |
| ·拟南芥花粉核的DAPI染色 | 第37页 |
| ·拟南芥花粉体外萌发实验 | 第37-38页 |
| ·拟南芥线粒体的分离 | 第38-39页 |
| ·线粒体琥珀酸脱氢酶活力测定 | 第39页 |
| ·荧光素酶法测定ATP含量 | 第39-40页 |
| ·Rhodamine 123染色法测定线粒体膜电位 | 第40-41页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第41-66页 |
| ·AtYDAC1-AtVDAC4基因T-DNA插入突变体的筛选和鉴定 | 第41-47页 |
| ·AtVDAC1-AtVDAC4突变体表型观察 | 第47-48页 |
| ·突变体vdacl-3表型观察与分析 | 第48-59页 |
| ·突变体vdacl-3花器官发育异常 | 第48-50页 |
| ·突变体vdacl-3植株角果短小、结实率降低 | 第50-51页 |
| ·转入AtVDACl基因可以恢复突变体vdacl-3的表型 | 第51-53页 |
| ·AtVDAC1基因突变影响雌性发育 | 第53-56页 |
| ·AtVDAC1基因突变影响雌配子体发育 | 第56-58页 |
| ·突变体vdacl-3雄配子体发育未受影响 | 第58-59页 |
| ·AtVDAC1基因的表达模式和蛋白的亚细胞定位 | 第59-61页 |
| ·AtVDAC1基因广泛表达于植物各组织和器官 | 第59-61页 |
| ·融合GFP的AtVDAC1蛋白定位于线粒体 | 第61页 |
| ·AtVDACl参与线粒体的能量代谢 | 第61-63页 |
| ·突变体vdacl-3线粒体ATP合成速率降低 | 第61-62页 |
| ·突变体vdacl-3线粒体膜电位降低 | 第62-63页 |
| ·AtVDAC1-AtVDAC4与动蛋白AtKP1互作分析 | 第63-66页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第66-71页 |
| ·AtVDAC1、2和4在植株生长发育过程中发挥重要作用 | 第66-67页 |
| ·AtVDAC1参与雌性生殖发育过程 | 第67-69页 |
| ·AtVDAC1参与线粒体的能量代谢 | 第69-70页 |
| ·展望 | 第70-71页 |
| 第五章 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-87页 |
| 附录 | 第87-90页 |
| 致谢 | 第90-92页 |
| 作者简历 | 第92页 |
