| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 前言 | 第10-21页 |
| ·植物内生菌 | 第10页 |
| ·植物内生真菌分布及其种群多样性 | 第10-11页 |
| ·植物内生真菌的生物学作用 | 第11-13页 |
| ·促进宿主植物的生长 | 第11-12页 |
| ·增强宿主植物对环境胁迫的抗性 | 第12-13页 |
| ·增强宿主植物的他感作用 | 第13页 |
| ·植物内生真菌的抗病作用机理 | 第13-15页 |
| ·产生抗生素类物质 | 第13页 |
| ·产生水解酶 | 第13-14页 |
| ·产生植物生长调节剂 | 第14页 |
| ·与病原菌竞争营养物质 | 第14页 |
| ·增强植物抵抗力 | 第14页 |
| ·诱导植物产生抗性 | 第14-15页 |
| ·产生生物碱、萜类或其他物质 | 第15页 |
| ·内生真菌的回接和检测技术 | 第15-17页 |
| ·内生真菌的回接技术 | 第15-16页 |
| ·内生真菌的绿色荧光蛋白标记 | 第16-17页 |
| ·荧光定量PCR技术 | 第17页 |
| ·状真菌的遗传转化技术 | 第17-19页 |
| ·原生质体-PEG转化法 | 第17页 |
| ·电激转化法 | 第17-18页 |
| ·基因枪转化法 | 第18页 |
| ·限制性内切酶介导转化法 | 第18页 |
| ·农杆菌介导转化法 | 第18-19页 |
| ·香蕉枯萎病 | 第19页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第19-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·供试菌株和植物材料 | 第21页 |
| ·培养基及主要生化试剂 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-29页 |
| ·农杆菌介导的内生真菌HND5的转化 | 第21-25页 |
| ·HND5转化子内生性测定 | 第25页 |
| ·内生真菌HND5生防潜力分析 | 第25-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-40页 |
| ·农杆菌介导的内生真菌HND5转化 | 第29-32页 |
| ·氯嘧磺隆敏感性 | 第29页 |
| ·乙酰丁香酮浓度 | 第29-30页 |
| ·最佳转化共培养时间 | 第30页 |
| ·农杆菌诱导时间 | 第30页 |
| ·农杆菌初始浓度 | 第30-31页 |
| ·HND5菌株分生孢子浓度 | 第31页 |
| ·共培养温度 | 第31-32页 |
| ·HND5转化子的评价 | 第32-34页 |
| ·平板活性检测 | 第32-33页 |
| ·转化子的PCR检测 | 第33页 |
| ·转化子的激光共聚焦显微镜观察 | 第33-34页 |
| ·HND5转化子的内生性测定 | 第34-35页 |
| ·PCR检测 | 第34页 |
| ·染色观察 | 第34-35页 |
| ·定殖香蕉根部的激光共聚焦观察 | 第35页 |
| ·内生真菌HND5对香蕉根组织防御酶活性影响测定 | 第35-38页 |
| ·苯丙氨酸酶 | 第35页 |
| ·过氧化物酶 | 第35-36页 |
| ·多酚氧化酶 | 第36-37页 |
| ·超氧化物歧化酶 | 第37页 |
| ·过氧化氢酶 | 第37-38页 |
| ·内生真菌HND5对香蕉枯萎病的生防潜力评价 | 第38-39页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-44页 |
| ·HND5的ATMT转化体系的优化 | 第40-41页 |
| ·HND5转化子的特性 | 第41页 |
| ·HND5转化子在香蕉根中的定殖 | 第41页 |
| ·内生真菌HND5对香蕉根防御酶的激活作用 | 第41-42页 |
| ·HND5对香蕉枯萎病的抗性评价 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| ·利用ATMT遗传转化技术，获得专利内生真菌HND5-GFP转化子，转化效率达110-155个转化子/106个孢子 | 第44页 |
| ·HND5-GFP转化子能成功回接臂行草叶片组织，并可在香蕉根部组织定植 | 第44页 |
| ·HND5菌株接种FOC4处理过的香蕉植株，其与抗性反应相关几种防御酶活性明显增加 | 第44页 |
| ·盆栽HND5回接香蕉植株对枯菱病表现出一定抗病性，最好防效达68.19% | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-56页 |
| 附录一 | 第56-60页 |
| 附录二 | 第60-61页 |
| 附录三 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
