| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 1 综述 | 第11-23页 |
| ·海洋氮循环概述 | 第11-12页 |
| ·氮的存在形态 | 第11页 |
| ·海洋氮循环 | 第11-12页 |
| ·厌氧氨氧化细菌概述 | 第12-15页 |
| ·厌氧氨氧化细菌的生化反应机理 | 第12-13页 |
| ·厌氧氨氧化细菌的多样性研究 | 第13-14页 |
| ·厌氧氨氧化细菌对海洋氮循环的作用 | 第14-15页 |
| ·厌氧氨氧化细菌富集培养研究概述 | 第15-19页 |
| ·富集厌氧氨氧化细菌的反应器 | 第16-17页 |
| ·影响厌氧氨氧化细菌富集的因素 | 第17-18页 |
| ·Mn元素对厌氧氨氧化细菌的影响 | 第18-19页 |
| ·厌氧氨氧化细菌多样性的研究方法 | 第19-23页 |
| ·克隆基因文库法 | 第19-21页 |
| ·DGGE | 第21页 |
| ·RT-PCR | 第21-23页 |
| 2 研究目的、内容和技术路线 | 第23-25页 |
| ·研究目的 | 第23页 |
| ·研究内容 | 第23-24页 |
| ·研究的技术路线 | 第24-25页 |
| 3 实验材料和方法 | 第25-36页 |
| ·实验材料 | 第25-29页 |
| ·样品采集 | 第25页 |
| ·沉积物样品理化指标的测定 | 第25-26页 |
| ·实验主要试剂 | 第26页 |
| ·实验主要分子生物学试剂盒 | 第26页 |
| ·实验主要培养基 | 第26-27页 |
| ·实验主要引物 | 第27-28页 |
| ·富集海洋性Anammox菌的实验装置和工艺流程 | 第28-29页 |
| ·实验主要显色剂配制方法 | 第29页 |
| ·实验主要仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-36页 |
| ·Anammox菌16S rRNA基因文库的构建 | 第29-33页 |
| ·沉积物中Anammox菌和总菌16S rRNA基因定量分析 | 第33-34页 |
| ·Anammox菌16S rRNA基因序列分析方法及统计学分析方法 | 第34-35页 |
| ·富集海洋性Anammox菌反应器化学指标分析方法 | 第35-36页 |
| 4 黄海北部海底沉积物Anammox菌数量和群落多样性研究 | 第36-52页 |
| ·沉积物理化指标性质初步研究 | 第36-37页 |
| ·黄海北部海底沉积物Anammox菌群落多样性分析 | 第37-45页 |
| ·沉积物宏基因组DNA提取结果与分析 | 第37-38页 |
| ·Anammox菌16S rRNA基因PCR扩增结果与分析 | 第38-40页 |
| ·Anammox菌系统发育树的建立与分析 | 第40-45页 |
| ·沉积物Anammox菌和总菌16S rRNA基因定量分析 | 第45-48页 |
| ·Anammox菌和总菌16S rRNA基因RT-PCR标准曲线结果分析 | 第45-46页 |
| ·海底沉积物中Anammox菌和总菌16S rRNA基因定量结果分析 | 第46-48页 |
| ·沉积物中Anammox细菌与其环境因素之间的关系 | 第48-50页 |
| ·史皮尔曼等级相关系数分析(p) | 第48-49页 |
| ·冗余(Redundancy analysis,RDA)分析 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-52页 |
| 5 MnO_2对海底沉积物Anammox菌的富集培养影响研究 | 第52-59页 |
| ·反应器接种底泥的选择 | 第52页 |
| ·R1反应器和R2反应器的启动情况 | 第52-56页 |
| ·反应器运行适应阶段 | 第52-54页 |
| ·反应器运行活性提高阶段 | 第54-55页 |
| ·反应器运行活性恢复阶段及稳定阶段 | 第55-56页 |
| ·R1反应器和R2反应器运行过程中总氮变化情况 | 第56-57页 |
| ·本章小结 | 第57-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 附录A | 第65-66页 |
| 附录B | 第66-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
