| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 中文文摘 | 第4-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-28页 |
| ·生物材料与组织工程 | 第10-17页 |
| ·组织工程支架材料的制备与评价方法 | 第10-11页 |
| ·细胞与生物材料复合培养技术 | 第11-12页 |
| ·丝素材料在组织工程上的研究进展 | 第12-17页 |
| ·蜘蛛丝的研究概况 | 第17-19页 |
| ·皮肤创面修复的研究概况 | 第19-26页 |
| ·烧伤创面修复过程与评价 | 第20-22页 |
| ·皮肤敷料材料 | 第22-23页 |
| ·组织工程化皮肤 | 第23-25页 |
| ·皮肤创面修复材料的研究进展 | 第25-26页 |
| ·本研究的背景、主要内容及意义 | 第26-28页 |
| ·本研究的背景 | 第26页 |
| ·本研究的主要内容 | 第26-27页 |
| ·本研究的意义 | 第27-28页 |
| 第2章 pNSR-32/BL21(DE3)pLysS基因工程菌表达重组蛛丝蛋白的规模化分离纯化研究 | 第28-40页 |
| ·材料 | 第28-30页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28-29页 |
| ·常用溶液 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-32页 |
| ·超声破碎细胞 | 第30页 |
| ·重组蛛丝蛋白纯化条件 | 第30-31页 |
| ·规模化纯化 | 第31页 |
| ·蛋白质纯度与浓度测定 | 第31-32页 |
| ·结果 | 第32-37页 |
| ·超声破碎细胞 | 第32-33页 |
| ·加热对重组蛋白纯化的影响 | 第33-34页 |
| ·pH对重组蛋白纯化的影响 | 第34-35页 |
| ·硫酸铵饱和度对重组蛋白纯化的影响 | 第35页 |
| ·小量纯化验证实验 | 第35-37页 |
| ·规模化纯化 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| ·结论 | 第38-40页 |
| 第3章 重组蛛丝蛋白支架材料的细胞相容性 | 第40-66页 |
| ·材料 | 第40-44页 |
| ·细胞株 | 第40页 |
| ·主要试剂 | 第40页 |
| ·主要仪器 | 第40-41页 |
| ·常用溶液 | 第41-44页 |
| ·方法 | 第44-49页 |
| ·支架材料的制备 | 第44页 |
| ·细胞培养与保存 | 第44-45页 |
| ·MTT实验 | 第45-46页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第46-47页 |
| ·细胞与支架材料复合培养 | 第47页 |
| ·检测方法 | 第47-49页 |
| ·结果 | 第49-59页 |
| ·支架材料制备 | 第49页 |
| ·培养细胞的特性 | 第49-51页 |
| ·体外细胞毒性实验 | 第51-56页 |
| ·细胞与重组蛛丝蛋白支架材料复合培养 | 第56-59页 |
| ·讨论 | 第59-61页 |
| ·结论 | 第61-66页 |
| 第4章 重组蛛丝蛋白材料—细胞复合物在烫伤修复中的初步应用 | 第66-84页 |
| ·材料 | 第66-68页 |
| ·细胞株 | 第66页 |
| ·支架材料 | 第66页 |
| ·实验动物 | 第66页 |
| ·主要试剂 | 第66-67页 |
| ·主要仪器和器械 | 第67-68页 |
| ·方法 | 第68-71页 |
| ·支架材料制备 | 第68页 |
| ·细胞与支架材料复合培养 | 第68页 |
| ·建立烫伤模型 | 第68-69页 |
| ·动物实验 | 第69页 |
| ·检测方法 | 第69-71页 |
| ·结果 | 第71-74页 |
| ·细胞与支架材料复合培养结果 | 第71页 |
| ·建立烫伤模型结果 | 第71页 |
| ·烫伤修复实验过程 | 第71页 |
| ·大体观察结果 | 第71-72页 |
| ·羟脯氨酸含量测定结果 | 第72-73页 |
| ·HE染色结果 | 第73页 |
| ·免疫组化结果 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74-75页 |
| ·结论 | 第75-84页 |
| 结论 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-96页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第96-98页 |
| 致谢 | 第98-100页 |
| 个人简历 | 第100-102页 |