| 中文摘要 | 第11-12页 |
| 英文摘要 | 第12-13页 |
| 文献综述 | 第14-24页 |
| 1 酮体的研究进展 | 第14-22页 |
| 1.1 酮体的代谢机制 | 第14-17页 |
| 1.1.1 酮体的生成、转运与分解 | 第14-15页 |
| 1.1.2 HMGCS2与OXCT1的调节 | 第15-17页 |
| 1.2 酮体的多维生物学功能 | 第17-21页 |
| 1.2.1 酮体在能量代谢中的重要作用 | 第17页 |
| 1.2.2 β-羟丁酸的信号传导功能 | 第17-18页 |
| 1.2.3 酮体的抗炎与促炎反应 | 第18-20页 |
| 1.2.4 酮体对氧化应激与神经保护作用 | 第20-21页 |
| 1.3 酮体的检测方法 | 第21-22页 |
| 1.3.1 硝普盐法 | 第21页 |
| 1.3.2 分光光度法 | 第21页 |
| 1.3.3 电化学传感器法 | 第21-22页 |
| 1.3.4 呼气检测法 | 第22页 |
| 2 寄生虫病的概述 | 第22-23页 |
| 2.1 伊氏锥虫病的概述 | 第22-23页 |
| 2.2 刚地弓形虫病的概述 | 第23页 |
| 3 本研究的目的与意义 | 第23-24页 |
| 第一章 两种寄性生原虫感染小鼠后酮体水平测定 | 第24-38页 |
| 1.1 材料 | 第24-25页 |
| 1.1.1 细胞、寄生虫和试验动物 | 第24页 |
| 1.1.2 试剂 | 第24页 |
| 1.1.3 其他材料 | 第24页 |
| 1.1.4 仪器设备 | 第24-25页 |
| 1.2 方法 | 第25-32页 |
| 1.2.1 主要溶剂和培养液的配制 | 第25-26页 |
| 1.2.2 寄生虫的体外培养 | 第26-28页 |
| 1.2.3 伊氏锥虫与弓形虫感染小鼠模型的建立 | 第28页 |
| 1.2.4 小鼠的分组、处理及样品采集 | 第28-29页 |
| 1.2.5 小鼠外周血中酮体水平检测 | 第29页 |
| 1.2.6 小鼠肝脏与脑组织中酮体含量检测 | 第29-32页 |
| 1.3 结果与分析 | 第32-36页 |
| 1.3.1 伊氏锥虫与弓形虫感染小鼠模型的建立 | 第32页 |
| 1.3.2 寄生虫感染小鼠后观察结果 | 第32页 |
| 1.3.3 小鼠外周血酮体水平检测结果 | 第32-34页 |
| 1.3.4 小鼠肝脏与脑组织酮体含量检测结果 | 第34-36页 |
| 1.4 讨论 | 第36-37页 |
| 1.4.1 锥虫对小鼠酮体代谢影响讨论 | 第36-37页 |
| 1.4.2 弓形虫对小鼠酮体代谢影响讨论 | 第37页 |
| 1.5 小结 | 第37-38页 |
| 第二章 两种寄生性原虫感染对小鼠酮体代谢途径相关酶基因转录水平的影响 | 第38-59页 |
| 2.1 材料 | 第38-39页 |
| 2.1.1 质粒和感受态细胞 | 第38页 |
| 2.1.2 试剂 | 第38页 |
| 2.1.4 仪器设备 | 第38-39页 |
| 2.2 方法 | 第39-49页 |
| 2.2.1 主要试剂和培养基的配制 | 第39-40页 |
| 2.2.2 酮体代谢途径相关酶基因引物的设计与合成 | 第40-41页 |
| 2.2.3 肝脏、脑组织总RNA的提取及其完整性鉴定 | 第41-42页 |
| 2.2.4 mRNA的反转录 | 第42-43页 |
| 2.2.5 引物特异性的验证 | 第43-48页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR相对标准曲线的建立 | 第48-49页 |
| 2.2.7 实时荧光定量PCR检测 | 第49页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第49页 |
| 2.3 结果与分析 | 第49-57页 |
| 2.3.1 肝脏、脑组织总RNA提取及其完整性鉴定结果 | 第49-50页 |
| 2.3.2 引物特异性的检验结果 | 第50-51页 |
| 2.3.3 实时荧光定量PCR相对标准曲线的建立 | 第51-54页 |
| 2.3.4 酮体代谢途径相关酶基因相对转录水平检测 | 第54-57页 |
| 2.4 讨论 | 第57-58页 |
| 2.4.1 伊氏锥虫对小鼠酮体代谢途径相关酶基因转录水平的影响 | 第57页 |
| 2.4.2 刚地弓形虫对小鼠酮体代谢途径相关酶基因转录水平影响的讨论 | 第57-58页 |
| 2.5 小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第67-68页 |
