摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 引言 | 第11-27页 |
1.1 皂苷类化合物 | 第11-13页 |
1.1.1 甾体皂苷类化合物 | 第11-12页 |
1.1.2 三萜皂苷类化合物 | 第12-13页 |
1.2 盾叶薯蓣 | 第13-15页 |
1.2.1 盾叶薯蓣形态 | 第13-14页 |
1.2.2 盾叶薯蓣生长要求及地理分布 | 第14页 |
1.2.3 盾叶薯蓣化学成分 | 第14-15页 |
1.3 薯蓣皂苷(元)作用及生物合成研究进展 | 第15-23页 |
1.3.1 薯蓣皂苷元及薯蓣皂苷作用 | 第15-18页 |
1.3.1.1 抗肿瘤作用 | 第16-17页 |
1.3.1.2 抗癌作用 | 第17页 |
1.3.1.3 降血脂作用 | 第17页 |
1.3.1.4 调节免疫功能作用 | 第17页 |
1.3.1.5 治疗心血管疾病的作用 | 第17页 |
1.3.1.6 在农业生产中的作用 | 第17-18页 |
1.3.1.7 在日化方面的作用 | 第18页 |
1.3.2 薯蓣皂苷(元)生物合成研究进展 | 第18-23页 |
1.3.2.1 上游至2,3-氧化鲨烯的合成阶段 | 第19-20页 |
1.3.2.2 2 ,3-氧化鲨烯至胆固醇合成阶段 | 第20-21页 |
1.3.2.3 胆固醇至薯蓣皂苷元合成阶段 | 第21-22页 |
1.3.2.4 薯蓣皂苷元至薯蓣皂苷合成阶段 | 第22-23页 |
1.4 转录组及转录组在药用植物研究中的利用 | 第23-24页 |
1.4.1 转录组 | 第23页 |
1.4.2 转录组在药用植物研究中的应用 | 第23-24页 |
1.5 本研究内容及其意义 | 第24-27页 |
1.5.1 研究内容 | 第24页 |
1.5.2 本研究的意义 | 第24-27页 |
第2章 实验材料与方法 | 第27-35页 |
2.1 实验材料 | 第27-28页 |
2.1.1 实验主要仪器 | 第27页 |
2.1.2 实验试剂 | 第27-28页 |
2.1.3 植物材料 | 第28页 |
2.2 实验方法 | 第28-35页 |
2.2.1 薯蓣皂苷元及薯蓣皂苷样品提取与含量测定 | 第28-29页 |
2.2.1.1 薯蓣皂苷元样品提取方法 | 第28-29页 |
2.2.1.2 薯蓣皂苷样品提取方法 | 第29页 |
2.2.1.3 薯蓣皂苷元及薯蓣皂苷样品含量测定方法 | 第29页 |
2.2.2 盾叶薯蓣总RNA提取及质量检验 | 第29-30页 |
2.2.2.1 盾叶薯蓣总RNA提取 | 第29-30页 |
2.2.2.2 盾叶薯蓣总RNA质量检验 | 第30页 |
2.2.3 cDNA第一条链合成 | 第30-31页 |
2.2.4 转录组数据库构建 | 第31-33页 |
2.2.4.1 总RNA提取及质量检测 | 第32页 |
2.2.4.2 转录组文库构建 | 第32页 |
2.2.4.3 上机测序 | 第32页 |
2.2.4.4 生物信息分析 | 第32-33页 |
2.2.5 实时荧光定量PCR | 第33-35页 |
第3章 结果与分析 | 第35-53页 |
3.1 盾叶薯蓣中薯蓣皂苷元与薯蓣皂苷含量 | 第35-36页 |
3.2 转录组测序结果分析 | 第36-37页 |
3.3 测序组装结果统计与分析 | 第37-38页 |
3.4 unigene数据库对比结果 | 第38-39页 |
3.5 NR数据库注释结果 | 第39-40页 |
3.6 KOG数据库注释结果 | 第40-41页 |
3.7 GO数据库注释结果 | 第41-42页 |
3.8 KEGG数据库注释结果 | 第42-43页 |
3.9 unigene差异表达分析 | 第43-44页 |
3.10 荧光定量结果分析 | 第44-45页 |
3.11 上游合成至2,3-氧化鲨烯合成阶段分析 | 第45-49页 |
3.12 2 ,3-氧化鲨烯至胆固醇合成阶段分析 | 第49页 |
3.13 胆固醇至薯蓣皂苷元合成阶段分析 | 第49-51页 |
3.14 薯蓣皂苷元至薯蓣皂苷合成阶段分析 | 第51页 |
3.15 薯蓣皂苷合成相关转录因子分析 | 第51-53页 |
第4章 讨论 | 第53-55页 |
4.1 盾叶薯蓣转录组构建 | 第53页 |
4.2 薯蓣皂苷合成途径相关基因挖掘 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |
附录 | 第61-63页 |
致谢 | 第63-65页 |
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第65页 |