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Pectobacterium中不同蛋白致病相关功能分析与糖代谢途径的进化比较

摘要第8-11页
ABSTRACT第11-13页
上篇 文献综述第15-32页
    1 Pectobacterium细菌的分类及进化研究进展第16-22页
        1.1 软腐肠杆菌(Soft rot enterobacteriaceae)生物学特征第16-17页
        1.2 软腐肠杆菌的系统分类第17-19页
        1.3 系统分类学的分析方法第19-22页
    2 Pectobacterium致病因子及其与寄主互作的研究进展第22-27页
        2.1 胞外植物细胞壁降解酶类第22-23页
            2.1.1 果胶酶第22-23页
            2.1.2 纤维素酶第23页
            2.1.3 蛋白酶第23页
        2.2 毒力相关蛋白第23-24页
        2.3 次生代谢产物第24页
        2.4 Pectobacterium毒力网络的调控第24-26页
            2.4.1 群体感应系统第24-25页
            2.4.2 双组分系统(two-component signal transduction system, TCSTS)第25页
            2.4.3 其他调控因子第25-26页
        2.5 植物病原细菌与寄主植物的互作研究第26-27页
    3 细菌中主要的糖代谢途径及其与细菌毒力的关系第27-30页
        3.1 细菌中主要的糖代谢途径第27-30页
            3.1.1 EMP途径第28页
            3.1.2 PP途径第28-29页
            3.1.3 ED途径第29-30页
        3.2 病原细菌中糖代谢与致病表型的关系密切第30页
    4 本文的研究目的和意义第30-32页
下篇 研究内容第32-96页
    第一章 Pectobacterium carotovorum菌株PccS1中KdgR和PotFGHI致病相关功能分析第34-50页
        1 引言第35-36页
        2 材料与方法第36-45页
            2.1 供试菌株与质粒第36-37页
            2.2 细菌基因组DNA的提取第37页
            2.3 DNA操作体系第37-40页
            2.4 敲除突变体△kdgR和△potFGHI的构建第40-41页
            2.5 致病性测定第41-42页
            2.6 植物细胞壁降解酶活性测定第42页
            2.7 实时荧光定量PCR第42-45页
        3 结果与分析第45-48页
            3.1 实时荧光定量PCR结果显示,编码上调表达的蛋白的基因在转录水平也上调表达第45-46页
            3.2 敲除突变体ApotFGHI和△kdgR的获得第46-47页
            3.3 potFGHI和kdgR缺失后对PccS1的毒力没有显著性影响第47-48页
            3.4 胞外酶活性测定结果显示△kdgR的胞外果胶酶活性增强第48页
        4 讨论第48-50页
    第二章 P.atrosepticum中Entner-Doudoroff途径的关键蛋白Edd和Eda的致病相关功能分析第50-74页
        1 引言第52-53页
        2 材料与方法第53-62页
            2.1 供试菌株、质粒和培养条件第53-54页
            2.2 细菌基因组DNA提取第54页
            2.3 P.atrosepticum SCRI 1039中eda/edd/zwflpfkB敲除突变体的构建第54-58页
            2.4 P.atrosepticum SCRI 1039中eda敲除突变体的互补菌株构建第58-60页
            2.5 致病性测定第60-61页
            2.6 生长曲线测定第61页
            2.7 植物细胞壁降解酶活性测定第61页
            2.8 致病相关基因表达第61-62页
        3 结果与分析第62-71页
            3.1 Pectobacterium中eda和edd的同源基因及上下游核酸序列分析第62-63页
            3.2 P.atrosepticum SCRI 1039中敲除突变体△eda和△edd的获得第63-64页
            3.3 △eda在寄主马铃薯块茎上致病性显著减弱,而△edd对致病性无影响第64-65页
            3.4 外源表达的eda可以恢复突变体的致病性第65-66页
            3.5 在常规培养基(LB和MM+0.2%葡萄糖)中,缺失eda仅影响P.atrosepticum最初的生长第66-67页
            3.6 缺失eda后,P. atrosepticum的胞外果胶酶活性显著减弱第67-68页
            3.7 △eda不能利用果胶分解产物多聚半乳糖醛酸和半乳糖醛酸生长第68页
            3.8 △eda中果胶分解代谢相关的基因表达量显著下调第68-70页
            3.9 △eda在寄主马铃薯植株上定殖能力减弱,无法引起典型的黑胫病症状第70页
            3.10 其他葡萄糖代谢途径对P.atrosepticum致病性无显著性影响第70-71页
        4 讨论第71-74页
    第三章 Pectobacterium中糖代谢四个途径关键基因的进化分析第74-96页
        1 引言第75-77页
        2 材料与方法第77-82页
            2.1 分类单元和分析位点选择第77-80页
            2.2 单位点基因序列的密码子比对第80页
            2.3 多位点序列串联拼接第80页
            2.4 系统发育树的构建第80-82页
        3 结果与分析第82-92页
            3.1 基于10个看家基因序列的系统发育分析第82-84页
            3.2 基于糖类代谢四个途径中18个关键基因核酸序列的系统发育分析第84-86页
            3.3 代谢途径进化树tanglegram分析示例(以pelC基因为例)第86-87页
            3.4 18个代谢途径基因tanglegram的Shimodaira-Hasegawa检验第87-92页
        4 讨论第92-96页
全文总结第96-98页
本文创新点第98-100页
参考文献第100-112页
附录一 培养基及试剂溶液的配制第112-118页
    1.1 培养基的配制第112-115页
    1.2 试剂的配制第115-116页
    1.3 抗生素溶液的配制第116-118页
附录二 进化分析结果第118-130页
    2.1 四个代谢途径进化树(共4个)第118-119页
    2.2 基于单一位点序列构建的进化树(共18个)第119-122页
    2.3 四个代谢途径(EMP、ED、PP和PD)系统发育树的tanglegram分析第122-124页
    2.4 Shimodaira-Hasegawa(SH)检验第124-125页
    2.5 其他差异不显著的11个代谢途径关键基因的tanglegram分析第125-129页
    2.6 序列比对分析(pemA基因)第129-130页
附录三 重要的载体图谱第130-132页
    3.1 pBluscript第130页
    3.2 pKNG101第130-131页
    3.3 pEX18第131-132页
攻读博士学位期间取得的学术成果目录第132-134页
致谢第134-135页

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