| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 英文缩略语 | 第12-16页 |
| 第一部分：发生发育中远曲小管和集合管膜转运体的表达 | 第16-30页 |
| 1 前言 | 第16-17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-20页 |
| 2.1 材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.2 方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 切片的制备 | 第18页 |
| 2.2.2 免疫组织化学染色 | 第18页 |
| 2.2.3 NCC表达的三维定位 | 第18-19页 |
| 2.2.4 AQP2和H~+-ATP酶阳性表达集合管面数密度(NA)的测定 | 第19页 |
| 2.2.5 统计分析 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-26页 |
| 3.1 NCC在发生发育远曲小管的分布 | 第20页 |
| 3.2 AQP2在发生发育集合管的表达 | 第20-21页 |
| 3.3 H~+-ATP酶的表达 | 第21页 |
| 3.4 不同发育阶段AQP2和H~+-ATP酶阳性表达面数密度的测量 | 第21-26页 |
| 4 讨论 | 第26-29页 |
| 5 结论 | 第29-30页 |
| 第二部分：连接小管的形态发生及膜转运体的表达 | 第30-48页 |
| 6 前言 | 第30-32页 |
| 7 材料和方法 | 第32-34页 |
| 7.1 材料 | 第32-33页 |
| 7.1.1 实验动物 | 第32页 |
| 7.1.2 主要试剂 | 第32页 |
| 7.1.3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 7.2 方法 | 第33-34页 |
| 7.2.1 连续切片的制备 | 第33页 |
| 7.2.2 肾组织连续切片的显微图像摄取、处理及配准；小管数字追踪和三维可视化 | 第33页 |
| 7.2.3 免疫组织化学染色 | 第33-34页 |
| 8 结果 | 第34-43页 |
| 8.1 连接小管的形态发生 | 第34-38页 |
| 8.1.1 光镜下连接小管的鉴别 | 第34-36页 |
| 8.1.2 电镜下开始连接处细胞详细信息的阐述 | 第36-38页 |
| 8.2 连接小管膜转运体的表达 | 第38-43页 |
| 9 讨论 | 第43-47页 |
| 10 结论 | 第47-48页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 综述 | 第54-60页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 个人简历 | 第62页 |
