摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
第1章 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 蜡梅简介 | 第11-13页 |
1.1.1 蜡梅种属关系及分布 | 第11页 |
1.1.2 蜡梅的品种分类 | 第11-12页 |
1.1.3 蜡梅的分子生物学研究 | 第12-13页 |
1.1.4 蜡梅切花的应用研究 | 第13页 |
1.2 植物激素乙烯对植物的影响 | 第13-16页 |
1.2.1 乙烯概述 | 第13-15页 |
1.2.2 乙烯对植物花朵开放的影响 | 第15-16页 |
1.2.3 乙烯与蜡梅花朵开放的关系 | 第16页 |
1.3 转录组测序及其发展 | 第16-21页 |
1.3.1 测序技术的发展 | 第17页 |
1.3.2 RNA-Seq技术的优势 | 第17-19页 |
1.3.3 RNA-Seq技术在植物研究中的应用 | 第19-21页 |
第2章 绪论 | 第21-23页 |
2.1 研究目的和意义 | 第21-22页 |
2.2 研究技术路线 | 第22-23页 |
第3章 蜡梅响应乙烯的转录组分析 | 第23-41页 |
3.1 实验材料及处理方法 | 第23页 |
3.2 研究方法 | 第23-27页 |
3.2.1 RNA提取及检测 | 第23页 |
3.2.2 文库构建与测序 | 第23-24页 |
3.2.3 测序数据质量剪切及统计 | 第24页 |
3.2.4 转录组拼接 | 第24-26页 |
3.2.5 功能注释和分类 | 第26页 |
3.2.6 转录因子数据分析 | 第26页 |
3.2.7 表达量分析与差异表达基因筛选 | 第26-27页 |
3.3 结果与分析 | 第27-39页 |
3.3.1 蜡梅花朵RNA提取及质量检测 | 第27页 |
3.3.2 转录组测序及序列拼接 | 第27-28页 |
3.3.3 unigene序列功能注释 | 第28-32页 |
3.3.4 差异表达基因分析 | 第32-35页 |
3.3.5 转录因子数据分析 | 第35-38页 |
3.3.6 qRT-PCR分析 | 第38-39页 |
3.4 讨论 | 第39-41页 |
3.4.1 转录组数据评估 | 第39页 |
3.4.2 差异基因分析 | 第39-41页 |
第4章 蜡梅CpERF1基因的克隆及表达分析 | 第41-57页 |
4.1 实验材料 | 第41-42页 |
4.1.1 植物材料 | 第41页 |
4.1.2 菌株与载体 | 第41页 |
4.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第41页 |
4.1.4 主要仪器设备 | 第41-42页 |
4.1.5自配的主要试剂 | 第42页 |
4.2 实验方法 | 第42-48页 |
4.2.1 蜡梅总RNA的提取及cDNA的合成 | 第42-44页 |
4.2.2 蜡梅CpERF1的克隆 | 第44-46页 |
4.2.3 蜡梅CpERF1基因的生物信息学分析 | 第46-47页 |
4.2.4 蜡梅CpERF1基因不同组织、不同发育时期表达特性的实时荧光定量分析 | 第47-48页 |
4.3 结果与分析 | 第48-54页 |
4.3.1 蜡梅CpERF1基因的获得及其序列特征 | 第48-49页 |
4.3.2 蜡梅CpERF1基因的同源性比对与进化树分析 | 第49-51页 |
4.3.3 蜡梅CpERF1基因编码蛋白的基本特征预测分析 | 第51-52页 |
4.3.4 蜡梅CpERF1基因表达特性的实时荧光定量分析 | 第52-54页 |
4.4 讨论 | 第54-57页 |
第5章 蜡梅CpERF1基因表达载体的构建及转基因植株的获得 | 第57-65页 |
5.1 实验材料 | 第57-58页 |
5.1.1 植物材料 | 第57页 |
5.1.2 菌株与载体 | 第57页 |
5.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第57页 |
5.1.4 主要仪器设备 | 第57页 |
5.1.5自配的主要试剂 | 第57-58页 |
5.2 实验方法 | 第58-62页 |
5.2.1 蜡梅CpERF1基因超表达载体的构建 | 第58-61页 |
5.2.2 转化拟南芥 | 第61页 |
5.2.3 转基因拟南芥的检测 | 第61-62页 |
5.3 结果与分析 | 第62-64页 |
5.3.1 植物表达载体的构建 | 第62-63页 |
5.3.2 转基因拟南芥的筛选 | 第63-64页 |
5.4 讨论 | 第64-65页 |
第6章 总结 | 第65-67页 |
6.1 主要结果 | 第65-66页 |
6.2 下一步计划 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-75页 |
缩略词表 | 第75-77页 |
致谢 | 第77-79页 |
附录 | 第79-86页 |