研究(一)足头向穿刺路径在膈肌下方肝肿瘤消融治疗中的基础及临床应用研究 | 第6-67页 |
英文缩略词表 | 第7-8页 |
第一部分 用于膈肌下方肝肿瘤病灶的足头向穿刺路径的CT模拟测量研究 | 第8-42页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
引言 | 第14-15页 |
1.材料与方法 | 第15-20页 |
1.1 纳入与排除标准 | 第15页 |
1.1.1 纳入标准 | 第15页 |
1.1.2 排除标准 | 第15页 |
1.2 模拟穿刺路径的相关参数测量 | 第15-20页 |
1.2.1 本研究所采用设备 | 第15页 |
1.2.2 确定标准层面 | 第15-16页 |
1.2.3 确定用作模拟穿刺的标准病灶 | 第16页 |
1.2.4 确定模拟穿刺路径 | 第16-17页 |
1.2.5 穿刺路径的可到达性评价 | 第17-18页 |
1.2.6 模拟穿刺路径的参数测量及穿刺宽容度评估 | 第18页 |
1.2.7 标准层面膈顶深度和穿刺路径的测量和记录 | 第18-20页 |
2.结果 | 第20-22页 |
3.讨论 | 第22-30页 |
3.1 肿瘤消融术在肝癌治疗中的地位和面临的挑战 | 第22-23页 |
3.2 前人对膈顶肝癌消融的探索 | 第23-26页 |
3.3 足头向穿刺测量研究的思路 | 第26-27页 |
3.3.1 标准病灶大小、形状的确定 | 第26页 |
3.3.2 标准病灶位置的确定 | 第26-27页 |
3.3.3 如何评价穿刺路径的优劣即是否在操作上可行 | 第27页 |
3.4 本研究测量结果的意义 | 第27-29页 |
3.5 足头向穿刺路径的优点 | 第29-30页 |
3.6 本研究不足之处 | 第30页 |
4.参考文献 | 第30-33页 |
附:本研究所用图片和表格 | 第33-42页 |
第二部分 采用足头向穿刺路径对膈下肝癌冷冻消融的临床对照研究 | 第42-67页 |
中文摘要 | 第43-45页 |
Abstract | 第45-47页 |
引言 | 第47页 |
1 材料和方法 | 第47-53页 |
1.1 材料 | 第47-48页 |
1.1.1 仪器设备 | 第47-48页 |
1.1.2 患者来源 | 第48页 |
1.2 方法 | 第48-52页 |
1.2.1 病灶分组 | 第48-49页 |
1.2.2 术前患者准备 | 第49页 |
1.2.3 术前计划穿刺路径 | 第49-50页 |
1.2.4 术中穿刺操作 | 第50-51页 |
1.2.5 冷冻消融治疗 | 第51页 |
1.2.6 术后处理 | 第51-52页 |
1.3 数据收集 | 第52-53页 |
1.3.1 穿刺技术相关评价 | 第52页 |
1.3.2 手术安全性评价 | 第52-53页 |
1.3.3 疗效评价 | 第53页 |
1.3.4 统计学处理 | 第53页 |
2 结果 | 第53-55页 |
3 讨论 | 第55-62页 |
参考文献 | 第62-64页 |
本研究中所用图片和表格 | 第64-67页 |
研究(二)藏茵陈水提物通过血管内皮细胞蛋白酪氨酸磷酸酶抑制斑马鱼血管生成的研究 | 第67-106页 |
中文摘要 | 第68-70页 |
Abstract | 第70-72页 |
英文缩略词表 | 第72-73页 |
引言 | 第73-74页 |
第一部分 藏茵陈抑制斑马鱼新生血管的观察 | 第74-87页 |
背景和目的 | 第74-75页 |
1.1 实验动物、试剂和仪器设备 | 第75-76页 |
1.1.1 实验动物 | 第75页 |
1.1.2 实验试剂 | 第75-76页 |
1.1.3 主要仪器和材料 | 第76页 |
1.2 实验方法与步骤 | 第76-79页 |
1.2.1 提取中药水提物 | 第76-77页 |
1.2.2 藏茵陈水提物指纹图谱 | 第77-78页 |
1.2.3 斑马鱼胚胎的准备 | 第78-79页 |
1.2.4 分组给药 | 第79页 |
1.2.5 指标观察 | 第79页 |
1.3 结果 | 第79-80页 |
1.4 讨论 | 第80-84页 |
1.4.1 采用斑马鱼作为实验动物的优点 | 第80-81页 |
1.4.2 绿色荧光标记斑马鱼血管优点 | 第81-82页 |
1.4.3 肿瘤血管生成机制及抗肿瘤血管途径 | 第82页 |
1.4.3 传统中医药抗肿瘤血管生成理论基础 | 第82-83页 |
1.4.4 清热解毒法在恶性肿瘤治疗中的意义 | 第83-84页 |
1.4.5 藏茵陈的中药理论及现代药理认识 | 第84页 |
1.5 参考文献 | 第84-87页 |
第二部分 藏茵陈水提物影响斑马鱼血管完整性的信号通路机制研究 | 第87-106页 |
背景和目的 | 第87页 |
2.1 实验动物、试剂和仪器设备 | 第87-89页 |
2.1.1 实验用动物 | 第87页 |
2.1.2 实验药品 | 第87页 |
2.1.3 主要试剂 | 第87-88页 |
2.1.4 仪器设备 | 第88页 |
2.1.5 主要药物和试剂的配制 | 第88-89页 |
2.2 实验方法及步骤 | 第89-92页 |
2.2.1 提取中药水提物 | 第89页 |
2.2.2 斑马鱼胚胎的准备 | 第89页 |
2.2.3 分组给药 | 第89页 |
2.2.4 实时荧光定量PCR | 第89-92页 |
2.2.5 数据分析 | 第92页 |
2.3 实验结果 | 第92-95页 |
2.4 讨论 | 第95-101页 |
2.4.1 与血管内皮细胞功能、活性相关的基因 | 第95-99页 |
2.4.2 血管内皮细胞连接的生理意义 | 第99-100页 |
2.4.3 藏茵陈水提物通过下调内皮蛋白酪氨酸磷酸酶表达抑制血管生成机制的推测 | 第100-101页 |
2.5 参考文献 | 第101-106页 |
结论 | 第106页 |
问题与展望 | 第106-107页 |
综述一 肝癌消融治疗进展 | 第107-129页 |
参考文献 | 第117-129页 |
综述二 瘤新生血管的分子调控机制 | 第129-138页 |
参考文献 | 第134-138页 |
致谢 | 第138-139页 |
在校期间公开发表的专著、学术论文及科研成果 | 第139-140页 |