摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
缩略语表 | 第15-18页 |
1 绪论 | 第18-50页 |
1.1 骨基础生物学 | 第19-27页 |
1.1.1 骨骼的结构和组成 | 第19-22页 |
1.1.2 骨组织的细胞组成 | 第22-25页 |
1.1.3 骨的生物调控机制 | 第25-27页 |
1.2 失重性骨丢失研究进展 | 第27-35页 |
1.2.1 失重对骨骼系统的影响 | 第27-28页 |
1.2.2 失重和模拟失重条件下骨质丢失研究 | 第28-30页 |
1.2.3 失重性骨丢失防治措施 | 第30-31页 |
1.2.4 地基环境模拟失重方法简介 | 第31-35页 |
1.3 骨质疏松的生物学研究概况 | 第35-42页 |
1.3.1 骨质疏松的定义、分类和危害 | 第35-37页 |
1.3.2 绝经后骨质疏松的概念及发病机制 | 第37-38页 |
1.3.3 骨质疏松主要相关信号转导通路 | 第38-42页 |
1.4 中医药防治骨质疏松 | 第42-45页 |
1.4.1 中医药防治骨质疏松研究 | 第42-43页 |
1.4.2 骨碎补防治骨质疏松研究概况 | 第43页 |
1.4.3 骨碎补基源植物及主要化学成分 | 第43-45页 |
1.5 课题的研究意义和内容 | 第45-50页 |
1.5.1 本课题设计思路和研究意义 | 第45-46页 |
1.5.2 主要研究内容 | 第46-50页 |
2 骨碎补总黄酮对失重性骨质疏松的预防作用 | 第50-68页 |
2.1 材料和仪器 | 第50-51页 |
2.1.1 实验材料 | 第50页 |
2.1.2 主要仪器与试剂 | 第50-51页 |
2.2 实验方法 | 第51-58页 |
2.2.1 动物分组及饲养 | 第51-52页 |
2.2.2 尾悬吊动物模型制备 | 第52页 |
2.2.3 大鼠各种标本采集及处理 | 第52-53页 |
2.2.4 各项评价指标的检测方法 | 第53-58页 |
2.2.5 统计学处理 | 第58页 |
2.3 实验结果 | 第58-64页 |
2.3.1 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠体重的影响 | 第58页 |
2.3.2 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠股骨和胫骨BMD的影响 | 第58-59页 |
2.3.3 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠血清和尿液生化指标的影响 | 第59-60页 |
2.3.4 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠股骨及胫骨力学性能的影响 | 第60-61页 |
2.3.5 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠股骨干骺端骨小梁微结构的影响 | 第61-63页 |
2.3.6 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠股骨矿化沉积率的影响 | 第63页 |
2.3.7 骨碎补总黄酮对尾悬吊大鼠骨组织相关信号通路的影响 | 第63-64页 |
2.4 讨论 | 第64-68页 |
3 骨碎补总黄酮对绝经后骨质疏松的预防作用 | 第68-88页 |
3.1 材料和仪器 | 第69-71页 |
3.1.1 实验材料 | 第69页 |
3.1.2 主要仪器与试剂 | 第69-70页 |
3.1.3 主要溶液的配制 | 第70-71页 |
3.2 实验方法 | 第71-76页 |
3.2.1 动物模型制备 | 第71页 |
3.2.2 动物分组 | 第71-72页 |
3.2.3 大鼠各标本采集和检测 | 第72页 |
3.2.4 各项评价指标的检测方法 | 第72-74页 |
3.2.5 骨碎补总黄酮对MC3T3-E1细胞活力、分化和矿化的影响 | 第74-76页 |
3.2.6 统计学处理 | 第76页 |
3.3 实验结果 | 第76-85页 |
3.3.1 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠体重的影响 | 第76页 |
3.3.2 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠子宫的影响 | 第76-77页 |
3.3.3 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠脏器指数及肝肾功能的影响 | 第77-79页 |
3.3.4 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠血清和尿液骨转换指标的影响 | 第79页 |
3.3.5 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠BMD和BMC的影响 | 第79-80页 |
3.3.6 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠股骨力学性能的影响 | 第80-81页 |
3.3.7 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠椎骨力学性能的影响 | 第81页 |
3.3.8 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠股骨干骺端骨小梁微结构的影响 | 第81-82页 |
3.3.9 骨碎补总黄酮对去卵巢大鼠股骨矿化沉积速率的影响 | 第82-83页 |
3.3.10 骨碎补总黄酮对成骨细胞活力的影响 | 第83页 |
3.3.11 骨碎补总黄酮对成骨细胞分化的影响 | 第83-84页 |
3.3.12 骨碎补总黄酮对成骨细胞矿化的影响 | 第84-85页 |
3.4 讨论 | 第85-88页 |
4 骨碎补总黄酮含药血清对成骨细胞活力、分化和矿化的影响 | 第88-98页 |
4.1 材料和仪器 | 第88-90页 |
4.1.1 实验材料 | 第88页 |
4.1.2 主要仪器与试剂 | 第88-89页 |
4.1.3 主要溶液的配制 | 第89-90页 |
4.2 实验方法 | 第90-91页 |
4.2.1 动物饲养及含药血清制备 | 第90页 |
4.2.2 MC3T3-E1细胞培养 | 第90页 |
4.2.3 MTT法检测细胞活力 | 第90页 |
4.2.4 碱性磷酸酶活性测定 | 第90页 |
4.2.5 骨钙素含量检测 | 第90-91页 |
4.2.6 茜素红S染色检测细胞矿化 | 第91页 |
4.2.7 统计学处理 | 第91页 |
4.3 实验结果 | 第91-94页 |
4.3.1 MC3T3-E1细胞形态观察 | 第91-92页 |
4.3.2 骨碎补总黄酮含药血清对MC3T3-E1细胞活力的影响 | 第92页 |
4.3.3 骨碎补总黄酮含药血清对MC3T3-E1细胞ALP活性的影响 | 第92-93页 |
4.3.4 骨碎补总黄酮含药血清对MC3T3-E1细胞OC含量的影响 | 第93页 |
4.3.5 骨碎补总黄酮含药血清对MC3T3-E1细胞矿化的影响 | 第93-94页 |
4.4 讨论 | 第94-98页 |
5 骨碎补中柚皮苷和新北美圣草苷对成骨细胞活力、分化和矿化的影响 | 第98-108页 |
5.1 材料和仪器 | 第98-100页 |
5.1.1 实验材料 | 第98页 |
5.1.2 主要仪器与试剂 | 第98-100页 |
5.2 实验方法 | 第100-102页 |
5.2.1 骨碎补总黄酮主要成分的分析鉴定 | 第100页 |
5.2.2 MC3T3-E1细胞培养及诱导分化 | 第100-101页 |
5.2.3 MTT法检测细胞活力 | 第101页 |
5.2.4 碱性磷酸酶活性测定 | 第101页 |
5.2.5 骨钙素含量测定 | 第101页 |
5.2.6 茜素红S染色检测细胞矿化 | 第101页 |
5.2.7 统计学处理 | 第101-102页 |
5.3 实验结果 | 第102-106页 |
5.3.1 骨碎补主要化学成分分析 | 第102-103页 |
5.3.2 柚皮苷和新北美圣草苷对MC3T3-E1细胞活力的影响 | 第103-104页 |
5.3.3 柚皮苷和新北美圣草苷对MC3T3-E1细胞ALP活性的影响 | 第104-105页 |
5.3.4 柚皮苷和新北美圣草苷对MC3T3-E1细胞OC分泌的影响 | 第105-106页 |
5.3.5 柚皮苷和新北美圣草苷对MC3T3-E1细胞矿化的影响 | 第106页 |
5.4 讨论 | 第106-108页 |
6 骨碎补总黄酮、柚皮苷和新北美圣草苷对成骨细胞作用机制的研究 | 第108-132页 |
6.1 材料和仪器 | 第108-111页 |
6.1.1 实验材料 | 第108页 |
6.1.2 主要仪器与试剂 | 第108-110页 |
6.1.3 主要溶液的配制 | 第110-111页 |
6.2 实验方法 | 第111-115页 |
6.2.1 细胞培养及给药 | 第111页 |
6.2.2 Real-TimePCR检测MC3T3-E1细胞成骨分化相关基因的表达 | 第111-114页 |
6.2.3 Western-bloting检测MC3T3-E1细胞成骨分化相关蛋白的表达 | 第114-115页 |
6.2.4 统计学方法 | 第115页 |
6.3 实验结果 | 第115-129页 |
6.3.1 骨碎补总黄酮、柚皮苷和新北美圣草苷对Wnt/β-catenin通路的影响 | 第115-118页 |
6.3.2 骨碎补总黄酮、柚皮苷和新北美圣草苷对BMP通路的影响 | 第118-123页 |
6.3.3 骨碎补总黄酮、柚皮苷和新北美圣草苷对雌激素受体通路的影响 | 第123-126页 |
6.3.4 骨碎补总黄酮、柚皮苷和新北美圣草苷对OPG/RANK/RANKL的影响 | 第126-129页 |
6.4 讨论 | 第129-132页 |
7 总结与展望 | 第132-134页 |
7.1 研究工作总结 | 第132-133页 |
7.2 论文创新点 | 第133页 |
7.3 展望 | 第133-134页 |
参考文献 | 第134-152页 |
致谢 | 第152-154页 |
攻读博士学位期间发表的学术论文和参加科研情况 | 第154-156页 |