| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词 | 第17-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-46页 |
| 1.1 全谷类食品 | 第18-19页 |
| 1.2 糙米的营养成分 | 第19-26页 |
| 1.2.1 大分子营养物质 | 第19-21页 |
| 1.2.2 小分子营养物质 | 第21页 |
| 1.2.3 抗氧化性物质 | 第21-26页 |
| 1.2.3.1 酚酸 | 第22-24页 |
| 1.2.3.2 类黄酮 | 第24-26页 |
| 1.3 糙米的健康效应 | 第26-32页 |
| 1.3.1 全球的健康状况 | 第26-27页 |
| 1.3.2 心血管疾病和全谷类食品 | 第27-28页 |
| 1.3.3 癌症和全谷类食品 | 第28-30页 |
| 1.3.4 Ⅱ型糖尿病和全谷类 | 第30-31页 |
| 1.3.5 肥胖症和全谷类 | 第31-32页 |
| 1.4 水稻酚类化合物的生物合成和基因型环境效应 | 第32-41页 |
| 1.4.1 酚类化合物在水稻中的生物合成途径 | 第34-38页 |
| 1.4.2 酚类化合物合成的调控因子 | 第38-40页 |
| 1.4.3 酚类化合物在植物体内的生理功能和影响因素 | 第40-41页 |
| 1.5 基因连锁不平衡的全基因组关联分析 | 第41-44页 |
| 1.5.1 关联分析与全基因组关联分析 | 第42页 |
| 1.5.2 水稻关联分析的研究进展 | 第42-43页 |
| 1.5.3 水稻全基因组关联分析的研究进展和展望 | 第43-44页 |
| 1.6 糙米的潜在应用价值 | 第44-45页 |
| 1.7 本研究的目的及内容 | 第45-46页 |
| 第二章 稻米中酚类化合物的鉴定 | 第46-63页 |
| 2.1 材料与方法 | 第46-49页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第46-47页 |
| 2.1.2 酚酸的提取与分离 | 第47-48页 |
| 2.1.3 花青素的提取与分离 | 第48-49页 |
| 2.1.4 原花青素的提取与分离 | 第49页 |
| 2.2 结果与分析 | 第49-61页 |
| 2.2.1 常见酚酸的HPLC-QTOF-MS/MS分离鉴定 | 第49-52页 |
| 2.2.2 不常见酚酸和耦合阿魏酸的发掘 | 第52-59页 |
| 2.2.2.1 顺式芥子酸 | 第53-54页 |
| 2.2.2.2 顺式对香豆酸 | 第54-56页 |
| 2.2.2.3 异阿魏酸 | 第56-57页 |
| 2.2.2.4 耦合阿魏酸 | 第57-59页 |
| 2.2.3 花青素的HPLC-QTOF-MS/MS分离鉴定 | 第59-60页 |
| 2.2.4 原花青素的HPLC-QTOF-MS/MS分离鉴定 | 第60-61页 |
| 2.3 讨论 | 第61-63页 |
| 第三章 不同发育时期稻米中酚类化合物积累规律 | 第63-75页 |
| 3.1 材料与方法 | 第63-66页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第63-65页 |
| 3.1.2 总酚含量(TPC)的测定 | 第65页 |
| 3.1.3 DPPH自由基清除能力 | 第65页 |
| 3.1.4 氧自由基吸收能力(ORAC) | 第65-66页 |
| 3.1.5 总花青素(TAC)的提取及其含量检测 | 第66页 |
| 3.2 结果与分析 | 第66-70页 |
| 3.2.1 总酚的变化规律 | 第66-67页 |
| 3.2.2 总抗氧化性的变化规律 | 第67-68页 |
| 3.2.3 结合酚酸的变化规律 | 第68-69页 |
| 3.2.4 总花青素及其组分的变化规律 | 第69-70页 |
| 3.3 讨论 | 第70-75页 |
| 第四章 稻米酚类化合物的分布 | 第75-88页 |
| 4.1 材料与方法 | 第75-76页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第75-76页 |
| 4.1.2 实验数据处理 | 第76页 |
| 4.2 结果与分析 | 第76-86页 |
| 4.2.1 胚、胚乳和种皮的百分比 | 第76-78页 |
| 4.2.2 总酚含量 | 第78页 |
| 4.2.3 总抗氧化性 | 第78-81页 |
| 4.2.4 各种酚酸单体的定量分析 | 第81-85页 |
| 4.2.4.1 自由缀合酚酸 | 第81-83页 |
| 4.2.4.2 结合酚酸 | 第83-85页 |
| 4.2.5 总花青素及其组分 | 第85-86页 |
| 4.3 讨论 | 第86-88页 |
| 第五章 稻米多酚类物质的基因型×环境效应及遗传分析 | 第88-104页 |
| 5.1 材料与方法 | 第89-92页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第89页 |
| 5.1.2 酚类化合物的提取 | 第89-90页 |
| 5.1.3 总类黄酮含量测定 | 第90页 |
| 5.1.4 总原花青素测定 | 第90页 |
| 5.1.5 ABTS~+自由基吸收能力测定 | 第90-91页 |
| 5.1.6 酚类物质和抗氧化活性的数据统计分析 | 第91页 |
| 5.1.7 基因型数据 | 第91-92页 |
| 5.1.8 群体结构与主成分分析 | 第92页 |
| 5.1.9 QTL定位 | 第92页 |
| 5.2 结果与分析 | 第92-101页 |
| 5.2.1 糙米多酚类化合物的方差分析 | 第92-95页 |
| 5.2.2 糙米多酚类化合物相关性分析 | 第95页 |
| 5.2.3 群体结构分析 | 第95-98页 |
| 5.2.4 关联分析的模型比较 | 第98页 |
| 5.2.5 关联分析 | 第98-101页 |
| 5.3 讨论 | 第101-104页 |
| 5.3.1 多酚类化合物的方差分析及相关分析 | 第101-102页 |
| 5.3.2 糙米多酚类化合物的相关QTL | 第102-104页 |
| 第六章 类黄酮合成相关基因的时空表达及Ra基因功能研究 | 第104-122页 |
| 6.1 材料与方法 | 第105-110页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第105页 |
| 6.1.2 水稻材料的RNA提取 | 第105-106页 |
| 6.1.3 反转录和半定量PCR | 第106页 |
| 6.1.4 实时定量PCR | 第106-107页 |
| 6.1.5 Ra基因干扰 | 第107-110页 |
| 6.1.5.1 Ra序列的多样性及特异性序列的扩增 | 第108-109页 |
| 6.1.5.2 含Ra特异性序列的转基因载体构建 | 第109-110页 |
| 6.1.5.3 GUS染色与PCR扩增检测 | 第110页 |
| 6.2 结果与分析 | 第110-115页 |
| 6.2.1 类黄酮合成相关基因的空间表达差异性分析 | 第110-111页 |
| 6.2.3 类黄酮合成相关基因的时间表达差异性分析 | 第111页 |
| 6.2.4 Ra序列的多样性及其时空表达差异性分析 | 第111-114页 |
| 6.2.5 Ra基因干扰 | 第114-115页 |
| 6.3 讨论 | 第115-122页 |
| 6.3.1 类黄酮合成相关基因的时空表达差异分析 | 第115-118页 |
| 6.3.2 Ra基因的多样性及时空表达差异性分析 | 第118-120页 |
| 6.3.3 Ra的功能与展望 | 第120-122页 |
| 第七章 总结和展望 | 第122-126页 |
| 参考文献 | 第126-140页 |
| 作者简介 | 第140-141页 |
