| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-14页 |
| 第一章 研究背景 | 第14-37页 |
| 1.1 概述 | 第14-18页 |
| 1.1.1 乳酸菌与益生菌 | 第14-15页 |
| 1.1.2 鼠李糖乳杆菌及其应用 | 第15-18页 |
| 1.1.3 鼠李糖乳杆菌作为益生菌所面临的胁迫环境 | 第18页 |
| 1.2 胁迫应答的国内外研究动态 | 第18-22页 |
| 1.2.1 单因素胁迫研究 | 第19-21页 |
| 1.2.2 交互胁迫研究 | 第21-22页 |
| 1.3 蛋白质组学在应激反应机制中的应用 | 第22-27页 |
| 1.3.1 蛋白质组学简介 | 第22页 |
| 1.3.2 蛋白质组学在益生菌胁迫机制中的应用 | 第22-27页 |
| 1.4 本课题的研究内容及研究意义 | 第27-29页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第27页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第27-29页 |
| 1.5 本章参考文献 | 第29-37页 |
| 第二章 材料与方法 | 第37-46页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第37-39页 |
| 2.1.1 实验菌种 | 第37页 |
| 2.1.2 化学药品及仪器 | 第37-38页 |
| 2.1.3 培养基 | 第38页 |
| 2.1.4 各种溶液、缓冲液及配置方法 | 第38-39页 |
| 2.1.4.1 常用缓冲液 | 第38页 |
| 2.1.4.2 聚丙嫌味胺电泳(PAGE)所用溶液 | 第38-39页 |
| 2.2 实验方法 | 第39-46页 |
| 2.2.1 Lactobacillus rhamnosus ZY生长曲线测定 | 第39-40页 |
| 2.2.2 粒径大小与Zeta potential检测 | 第40-41页 |
| 2.2.3 红外光谱(FTIR)分析细胞表面性质 | 第41页 |
| 2.2.4 透射电镜(TEM) | 第41-42页 |
| 2.2.5 扫描电镜(SEM) | 第42-43页 |
| 2.2.6 全细胞蛋白样品制备 | 第43页 |
| 2.2.7 一维蛋白电泳 | 第43-44页 |
| 2.2.8 串联质谱分析(MALDI-TOF-MS-MS) | 第44-46页 |
| 第三章 鼠李糖乳杆菌对培养因子胁迫应答的初步研究 | 第46-63页 |
| 3.1 实验设计 | 第46-48页 |
| 3.1.1 鼠李糖乳杆菌生长曲线的测定 | 第46页 |
| 3.1.2 鼠李糖乳杆菌初始pH及接种量的优化设计 | 第46页 |
| 3.1.3 培养基成分L_(27)正交实验设计 | 第46-47页 |
| 3.1.4 Box-Behnken实验设计 | 第47页 |
| 3.1.5 培养基微量因子去除实验设计 | 第47页 |
| 3.1.6 红外光谱(FTIR)分析 | 第47-48页 |
| 3.1.7 蛋白分析 | 第48页 |
| 3.2 鼠李糖乳杆菌生长曲线 | 第48页 |
| 3.3 鼠李糖乳杆菌培养初始pH及接种量的优化 | 第48-50页 |
| 3.4 通过L_(27)正交实验方法分析MRS培养基中各成分的影响 | 第50-54页 |
| 3.5 通过Box-Behnken实验对显著培养因子进一步优化 | 第54-55页 |
| 3.6 非显著微量培养因子对鼠李糖乳杆菌生长的影响 | 第55-57页 |
| 3.7 培养基成分对鼠李糖乳杆菌细胞表面性质的影响 | 第57-59页 |
| 3.8 培养基成分对鼠李糖乳杆菌蛋白组的影响 | 第59-61页 |
| 3.9 本章小结 | 第61-62页 |
| 3.10 本章参考文献 | 第62-63页 |
| 第四章 离子胁迫影响鼠李糖乳杆菌生长及益生性能的研究 | 第63-80页 |
| 4.1 实验设计 | 第63-65页 |
| 4.1.1 梯度离子胁迫下菌生长的检测 | 第63页 |
| 4.1.2 透射电镜(TEM)观测菌形态 | 第63页 |
| 4.1.3 细胞表面电势(zeta potential)检测 | 第63页 |
| 4.1.4 益生性能检测设计 | 第63-64页 |
| 4.1.5 工业应用性能检测设计 | 第64-65页 |
| 4.1.6 蛋白分析 | 第65页 |
| 4.2 不同金属离子对鼠李糖乳杆菌生长的影响 | 第65-66页 |
| 4.3 金属离子对鼠李糖乳杆菌形态大小及细胞表面电势(Zeta potential)的影响 | 第66-68页 |
| 4.4 钙离子对鼠李糖乳杆菌益生性能的影响 | 第68-71页 |
| 4.4.1 钙离子对鼠李糖乳杆菌酸耐受性的影响 | 第68-70页 |
| 4.4.2 钙离子对鼠李糖乳杆菌口腔定殖能力的影响 | 第70页 |
| 4.4.3 钙离子对鼠李糖乳杆菌抑菌性能的影响 | 第70-71页 |
| 4.5 钙离子对鼠李糖乳杆菌工业应用价值的影响 | 第71-73页 |
| 4.5.1 钙离子对鼠李糖乳杆菌高温处理活力的影响 | 第72-73页 |
| 4.5.2 钙离子对鼠李糖乳杆菌低温贮藏及冷冻活力的影响 | 第73页 |
| 4.6 钙离子对鼠李糖乳杆菌蛋白表达的影响 | 第73-77页 |
| 4.7 本章小结 | 第77-78页 |
| 4.8 本章参考文献 | 第78-80页 |
| 第五章 组合胁迫改变鼠李糖乳杆菌细胞表面性质及其对热的交叉保护效应 | 第80-98页 |
| 5.1 实验设计 | 第80-82页 |
| 5.1.1 不同梯度醇胁迫菌生长的检测 | 第80页 |
| 5.1.2 扫描电镜(SEM)观察细胞形态 | 第80页 |
| 5.1.3 红外光谱(FTIR)检测 | 第80页 |
| 5.1.4 细胞表面电势(Zeta potential)检测 | 第80-81页 |
| 5.1.5 蛋白分析 | 第81页 |
| 5.1.6 热交叉保护实验设计 | 第81-82页 |
| 5.2 乙醇胁迫及Ca与乙醇组合胁迫条件的优化 | 第82-85页 |
| 5.3 乙醇胁迫及组合胁迫对鼠李糖乳杆菌细胞形态的影响 | 第85-86页 |
| 5.4 乙醇胁迫及复合胁迫对鼠李糖乳杆菌细胞表面性质的影响 | 第86-90页 |
| 5.4.1 FTIR分析不同胁迫条件下鼠李糖乳杆菌细胞表面性质 | 第87-88页 |
| 5.4.2 不同胁迫对鼠李糖乳杆菌Zeta potential的影响 | 第88-90页 |
| 5.5 乙醇胁迫及组合胁迫对鼠李糖乳杆菌蛋白组的影响 | 第90-92页 |
| 5.6 乙醇胁迫及组合胁迫对鼠李糖乳杆菌潜在的热交叉保护作用 | 第92-94页 |
| 5.7 本章小结 | 第94-95页 |
| 5.8 本章参考文献 | 第95-98页 |
| 第六章 结论与展望 | 第98-100页 |
| 6.1 结论 | 第98-99页 |
| 6.2 展望 | 第99-100页 |
| 附录 | 第100-102页 |
| 硕士阶段发表论文 | 第102-103页 |
| 致谢语 | 第103页 |
