| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 英文缩写略表 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1 紫菜多糖研究概况 | 第15-24页 |
| 1.1 紫菜多糖的提取 | 第15-16页 |
| 1.2 紫菜多糖的分离纯化及结构分析 | 第16-18页 |
| 1.3 紫菜多糖的生物活性 | 第18-24页 |
| 1.3.1 免疫调节功能 | 第18-19页 |
| 1.3.2 紫菜多糖的免疫增强作用 | 第19-22页 |
| 1.3.3 抗肿瘤作用 | 第22页 |
| 1.3.4 降血脂和降血糖作用 | 第22-23页 |
| 1.3.5 抗凝血和抗血栓作用 | 第23页 |
| 1.3.6 抗氧化和抗衰老作用 | 第23-24页 |
| 2 研究意义 | 第24页 |
| 3 主要研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 紫菜多糖的提取工艺的研究 | 第25-41页 |
| 1 前言 | 第25-26页 |
| 2 材料与仪器 | 第26-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26页 |
| 2.1.1 材料 | 第26页 |
| 2.1.2 试剂与仪器 | 第26页 |
| 2.2 试验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 总糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.2 还原糖测定 | 第27页 |
| 2.2.3 紫菜多糖热水提取单因素试验 | 第27-28页 |
| 2.2.4 响应面分析法优化紫菜多糖提取工艺条件 | 第28页 |
| 2.2.5 超声波提取紫菜多糖工艺优化设计 | 第28-29页 |
| 2.2.6 超声波协同纤维素酶提取紫菜多糖工艺优化试验 | 第29-30页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-39页 |
| 3.1 紫菜多糖总糖和还原糖含量标准曲线测定 | 第30页 |
| 3.1.1 总糖标准曲线的绘制 | 第30页 |
| 3.1.2 还原糖标准曲线的绘制 | 第30页 |
| 3.2 紫菜多糖热水浸提单因素与响应面分析结果 | 第30-39页 |
| 3.2.1 液固比对多糖提取率的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.2 浸提温度对多糖提取率的影响 | 第31页 |
| 3.2.3 浸提时间对多糖提取率的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.4 响应面分析方案及结果 | 第32-36页 |
| 3.2.5 超声波提取紫菜多糖正交试验结果 | 第36-37页 |
| 3.2.6 超声波协同纤维素酶提取紫菜多糖正交试验设计结果 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 5 小结 | 第40-41页 |
| 第三章 紫菜多糖脱蛋白工艺及分离纯化的研究 | 第41-52页 |
| 1 前言 | 第41页 |
| 2 材料与仪器 | 第41-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第41-42页 |
| 2.1.1 材料 | 第41页 |
| 2.1.2 试剂与仪器 | 第41-42页 |
| 2.2 试验方法 | 第42-46页 |
| 2.2.1 紫菜多糖纯化的工艺流程 | 第42页 |
| 2.2.2 紫菜多糖总糖含量测定 | 第42页 |
| 2.2.3 蛋白质含量的测定 | 第42-43页 |
| 2.2.4 脱蛋白方法比较 | 第43页 |
| 2.2.5 精制紫菜多糖的制备 | 第43-44页 |
| 2.2.6 DEAE-52纤维素离子交换柱层析纯化紫菜多糖 | 第44-45页 |
| 2.2.7 紫菜多糖的理化特性 | 第45-46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-49页 |
| 3.1 紫菜多糖脱蛋白效果比较 | 第46-48页 |
| 3.1.1 总糖含量标准曲线的测定 | 第46页 |
| 3.1.2 蛋白质含量标准曲线的测定 | 第46页 |
| 3.1.3 Sevage法 | 第46-47页 |
| 3.1.4 三氯乙酸法 | 第47-48页 |
| 3.2 Cellulose DEAE-52洗脱剂的选择 | 第48页 |
| 3.3 Cellulose DEAE-52离子交换层析洗脱曲线 | 第48-49页 |
| 3.4 紫菜多糖的理化特性分析 | 第49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 5 小结 | 第50-52页 |
| 第四章 紫菜多糖抗氧化活性及对小鼠体外免疫调节影响的研究 | 第52-69页 |
| 1 前言 | 第52页 |
| 2 材料和方法 | 第52-57页 |
| 2.1 试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 2.1.1 试验样品 | 第52页 |
| 2.1.2 试验动物 | 第52页 |
| 2.1.3 主要试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 2.2 试验方法 | 第53-57页 |
| 2.2.1 紫菜多糖体外抗氧化活性的测定 | 第53-55页 |
| 2.2.2 紫菜多糖及其各级分对小鼠肝组织匀浆丙二醛生成的影响 | 第55页 |
| 2.2.3 紫菜多糖及其各级分对小鼠肝线粒体脂质过氧化的抑制作用 | 第55-56页 |
| 2.2.4 紫菜多糖及其各级分对小鼠红细胞自氧化溶血的影响 | 第56页 |
| 2.2.5 紫菜多糖及其各级分对小鼠红细胞自氧化溶血时丙二醛生成的影响 | 第56页 |
| 2.2.6 紫菜多糖及其各级分对小鼠体外脾淋巴细胞增殖的影响 | 第56-57页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-66页 |
| 3.1 紫菜多糖及其各级分清除DPPH·自由基的测定 | 第57-58页 |
| 3.2 紫菜多糖及其各级分清除轻自由基的测定 | 第58-59页 |
| 3.3 紫菜多糖及其各级分还原能力的测定 | 第59-60页 |
| 3.4 紫菜多糖及其各级分对小鼠肝组织匀浆丙二醛生成的影响 | 第60-61页 |
| 3.5 紫菜多糖及其各级分对FeSO_4和H_2O_2诱导小鼠肝匀浆生成丙二醛的影响 | 第61-62页 |
| 3.6 紫菜多糖及其各级分对小鼠肝线粒体脂质过氧化的抑制作用 | 第62-63页 |
| 3.7 紫菜多糖及其各级分对小鼠红细胞自氧化溶血的影响 | 第63-64页 |
| 3.8 紫菜多糖及其各级分对小鼠红细胞自氧化溶血时丙二醛生成的影响 | 第64-65页 |
| 3.9 不同浓度条件下紫菜多糖各级分对小鼠体外脾淋巴细胞增殖的影响 | 第65-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| 5 小结 | 第68-69页 |
| 第五章 紫菜多糖纯度鉴定和结构初探 | 第69-84页 |
| 1 前言 | 第69页 |
| 2 材料和方法 | 第69-73页 |
| 2.1 试剂和仪器 | 第69-70页 |
| 2.1.1 材料及试剂 | 第69-70页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第70页 |
| 2.2 试验方法 | 第70-73页 |
| 2.2.1 紫菜多糖PP4的Sephadex G-100凝胶柱层析纯化 | 第70-71页 |
| 2.2.2 紫菜多糖的纯度鉴定 | 第71页 |
| 2.2.3 紫菜多糖的紫外光谱分析 | 第71页 |
| 2.2.4 紫菜多糖的红外光谱分析 | 第71-72页 |
| 2.2.5 紫菜多糖的单糖组成分析 | 第72页 |
| 2.2.6 高碘酸氧化分析和Smith降解 | 第72-73页 |
| 2.2.7 圆二色谱分析 | 第73页 |
| 3 结果与分析 | 第73-81页 |
| 3.1 紫菜多糖的Sephadex G-100葡聚糖凝胶柱层析 | 第73-74页 |
| 3.2 紫菜多糖的纯度鉴定 | 第74-75页 |
| 3.3 PP4a的紫外光谱分析 | 第75页 |
| 3.4 红外光谱分析 | 第75-76页 |
| 3.5 单糖组成分析 | 第76-78页 |
| 3.6 PP4a的高碘酸钠氧化和Smith降解 | 第78-79页 |
| 3.7 PP4a圆二色谱分析 | 第79-81页 |
| 4 讨论 | 第81-83页 |
| 5 小结 | 第83-84页 |
| 结论与展望 | 第84-86页 |
| (一) 结论 | 第84-85页 |
| (二) 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
