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水稻感染水稻条纹病毒后的基因转录谱和蛋白质表达谱

摘要第8-11页
Abstract第11-13页
1 前言第14-49页
    1.1 生物系统论第14-15页
    1.2 组学研究在系统生物学中的地位第15-16页
    1.3 基因转录组学和蛋白质组学的研究内容和方法第16-24页
        1.3.1 基因转录组学第16-19页
        1.3.2 蛋白质组学第19-22页
        1.3.3 组学数据的生物信息学分析第22-24页
            1.3.3.1 基因组数据库的构建和发展第22-23页
            1.3.3.2 "组学"研究数据分析软件的开发和应用第23-24页
    1.4 水稻基因转录组学和蛋白质组学研究进展第24-41页
        1.4.1 水稻基因转录组学研究进展第24-27页
        1.4.2 水稻蛋白质组学研究进展第27-41页
            1.4.2.1 水稻的发育蛋白质组学第27-30页
            1.4.2.2 水稻亚细胞组分的蛋白质组学第30-32页
            1.4.2.3 环境胁迫下的水稻蛋白质组学第32-37页
            1.4.2.4 激素处理条件下的水稻蛋白质组学第37-39页
            1.4.2.5 突变体或转基因水稻的蛋白质组学第39-40页
            1.4.2.6 蛋白质组学应用于水稻品种差异分析第40-41页
            1.4.2.7 翻译后修饰的蛋白质组学研究第41页
    1.5 水稻条纹叶枯病研究进展第41-47页
        1.5.1 水稻条纹叶枯病的发生和流行第41-42页
        1.5.2 水稻条纹叶枯病抗性的研究现状第42-44页
        1.5.3 水稻条纹病毒(RSV)的分子生物学第44-46页
        1.5.4 RSV的变异第46页
        1.5.5 水稻条纹叶枯病的细胞病理学变化第46-47页
    1.6 本研究的目的及意义第47-49页
2 不同水稻品种在感染RSV后的全基因组转录谱分析第49-87页
    2.1 材料与方法第49-53页
        2.1.1 试验材料第49-50页
            2.1.1.1 病毒来源第49页
            2.1.1.2 供试昆虫第49页
            2.1.1.3 供试水稻品种第49-50页
        2.1.2 水稻全基因组表达谱芯片第50页
        2.1.3 试验设计第50-51页
            2.1.3.1 供试水稻幼苗的栽培第50页
            2.1.3.2 病毒接种第50页
            2.1.3.3 样品的获取第50-51页
        2.1.4 水稻全基因组芯片杂交流程第51页
            2.1.4.1 RNA靶标的制备第51页
            2.1.4.2 芯片杂交、洗染和扫描第51页
            2.1.4.3 芯片数据的校正、归一化和数据提交第51页
        2.1.5 筛选差异基因第51-52页
        2.1.6 实时荧光定量PCR验证第52页
        2.1.7 差异基因的功能分析第52-53页
    2.2 RSV感染后水稻的基因转录谱检测第53-66页
        2.2.1 RNA样品的纯度和完整性检测第53-54页
        2.2.2 芯片检测质量判定第54-63页
            2.2.2.1 芯片扫描图第54-55页
            2.2.2.2 信噪检测第55-56页
            2.2.2.3 杂交信号判断第56-57页
            2.2.2.4 质控点分析第57-63页
        2.2.3 芯片上信号值的检测与比较第63-66页
        2.2.4 芯片杂交结果提交GEO数据库第66页
    2.3 水稻感染RSV后的基因表达谱差异分析第66-69页
        2.3.1 差异基因的筛选第66-68页
        2.3.2 聚类分析第68-69页
    2.4 实时荧光定量PCR验证第69-71页
    2.5 功能注释与分析第71-80页
        2.5.1 GeneOntology功能注释工具的比较和选择第71-73页
        2.5.2 在感染RSV后的两个水稻品种中都发生表达变化的基因的功能聚类第73页
        2.5.3 仅在感染RSV后的武育粳3号中发生表达变化的基因的功能聚类第73页
        2.5.4 仅在感染RSV后的KT95-418中发生表达变化的基因的功能聚类第73-80页
    2.6 差异基因的代谢途径分析第80-84页
    2.7 小结第84-87页
        2.7.1 芯片杂交质量判定第84-85页
            2.7.1.1 扫描图像分析第84页
            2.7.1.2 信号检测分析第84页
            2.7.1.3 质控分析第84页
            2.7.1.4 信号比较分析第84-85页
        2.7.2 基因表达谱差异分析第85页
        2.7.3 差异基因的功能注释第85-86页
        2.7.4 差异基因的代谢途径分析第86-87页
3 不同水稻品种在感染RSV后的蛋白质表达谱分析第87-123页
    3.1 材料与方法第87-94页
        3.1.1 试验材料第87页
        3.1.2 试验设计第87-88页
        3.1.3 仪器设备第88页
        3.1.4 主要试剂第88页
        3.1.5 水稻蛋白质组学分析流程第88-94页
            3.1.5.1 溶液配制第88-90页
            3.1.5.2 制备蛋白质干粉第90页
            3.1.5.3 蛋白质定量第90-91页
            3.1.5.4 IPG-SDS-PAGE双向电泳第91-94页
    3.2 两个水稻品种感染RSV后的叶片蛋白质双向电泳第94-96页
    3.3 水稻感染RSV后的叶片蛋白质表达谱差异分析第96-100页
    3.4 蛋白质点的MALDI-TOF-TOF/MS鉴定第100-105页
        3.4.1 MALDI-TOF-TOF/MS鉴定结果第100-105页
        3.4.2 MALDI-TOF-TOF/MS图谱和数据库检索第105页
    3.5 蛋白质点的功能分析第105-118页
        3.5.1 病毒蛋白质第105-107页
        3.5.2 光合作用相关的蛋白质第107-113页
            3.5.2.1 Rubisco第107-109页
            3.5.2.2 光合电子传递载体第109-111页
            3.5.2.3 PSⅡ放氧复合体第111-112页
            3.5.2.4 类囊体内腔17.4kDa蛋白第112-113页
        3.5.3 抗氧化酶类第113-115页
        3.5.4 核糖体蛋白质第115-116页
        3.5.5 其它蛋白第116-118页
    3.6 小结第118-123页
        3.6.1 双向电泳技术第118页
        3.6.2 蛋白质表达谱差异分析第118-119页
        3.6.3 MALDI-TOF-TOF质谱鉴定第119页
        3.6.4 蛋白质点的功能分析第119-123页
            3.6.4.1 病毒蛋白质第119-120页
            3.6.4.2 光合作用相关蛋白质第120-121页
            3.6.4.3 核糖体蛋白质第121页
            3.6.4.4 其他蛋白质第121-123页
4 全文讨论第123-130页
5 本研究的价值和创新点第130-131页
6 后续的研究方向第131-133页
参考文献第133-153页
附录1 差异基因列表第153-221页
附录2 实时荧光定量PCR验证的扩增曲线、熔解曲线和产物电泳图第221-224页
附录3 在武育粳3号中特异性表达上调基因的功能注释聚类表第224-229页
附录4 差异基因的代谢途径注释第229-236页
附录5 鉴定所得蛋白质的MALDI-TOF-TOF/MS图谱第236-249页
附录6 鉴定所得蛋白质的序列结构图第249-259页
附录7 匹配肽段列表第259-273页
致谢第273页

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