| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-33页 |
| 1.1 絮凝剂概述 | 第12页 |
| 1.2 微生物絮凝剂 | 第12-22页 |
| 1.2.1 微生物絮凝剂 | 第12-14页 |
| 1.2.2 微生物絮凝剂的特点 | 第14-15页 |
| 1.2.3 微生物絮凝剂的分类 | 第15-16页 |
| 1.2.4 产生絮凝剂的微生物 | 第16-17页 |
| 1.2.5 微生物絮凝剂的絮凝机理 | 第17-20页 |
| 1.2.6 微生物絮凝剂的应用 | 第20-22页 |
| 1.3 影响微生物絮凝剂合成的主要因素 | 第22-26页 |
| 1.3.1 培养基成分的影响 | 第22-24页 |
| 1.3.2 培养条件的影响 | 第24-26页 |
| 1.4 微生物絮凝剂絮凝活性的影响因素 | 第26-29页 |
| 1.4.1 pH值 | 第26页 |
| 1.4.2 温度 | 第26-27页 |
| 1.4.3 金属离子 | 第27-28页 |
| 1.4.4 絮凝剂添加量 | 第28-29页 |
| 1.5 极端环境对微生物絮凝剂活性的影响 | 第29页 |
| 1.6 中度嗜盐菌及其絮凝剂 | 第29-32页 |
| 1.6.1 中度嗜盐菌 | 第29-30页 |
| 1.6.2 中度嗜盐菌抵抗极端环境的机理 | 第30-31页 |
| 1.6.3 中度嗜盐菌合成絮凝剂及其应用现状 | 第31-32页 |
| 1.7 本文立题背景及意义 | 第32-33页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第33-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-35页 |
| 2.1.1 菌株 | 第33页 |
| 2.1.2 培养基 | 第33页 |
| 2.1.3 试剂 | 第33-34页 |
| 2.1.4 主要药品 | 第34-35页 |
| 2.2 仪器和设备 | 第35页 |
| 2.3 实验方法 | 第35-42页 |
| 2.3.1 菌株分离筛选 | 第35-36页 |
| 2.3.2 菌株培养方法 | 第36页 |
| 2.3.3 多糖纯化方法 | 第36页 |
| 2.3.4 多糖测定方法 | 第36页 |
| 2.3.5 16S rDNA鉴定 | 第36-37页 |
| 2.3.6 Ectoine合成量测定 | 第37-38页 |
| 2.3.7 ~1H-NMR分析方法 | 第38页 |
| 2.3.8 絮凝活性测定 | 第38-39页 |
| 2.3.9 絮凝率测定 | 第39页 |
| 2.3.10 固形物含量的测定 | 第39-40页 |
| 2.3.11 色度的测定 | 第40页 |
| 2.3.12 浊度的测定 | 第40-42页 |
| 第3章 产絮凝剂的中度嗜盐菌的筛选鉴定 | 第42-50页 |
| 3.1 实验材料方法 | 第42页 |
| 3.2 中度嗜盐菌的筛选 | 第42-44页 |
| 3.3 菌株絮凝活性测定 | 第44-45页 |
| 3.4 16S rDNA序列测定结果 | 第45-46页 |
| 3.5 Ectoine的合成及其核磁共振鉴定 | 第46-47页 |
| 3.6 Halomonas sp.W03胞外多糖的核磁共振鉴定 | 第47-49页 |
| 3.7 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 Halomonas sp.W03产胞外多糖条件的优化 | 第50-55页 |
| 4.1 实验材料方法 | 第50页 |
| 4.2 葡萄糖浓度对Halomonas sp.W03胞外多糖合成量的影响 | 第50-51页 |
| 4.3 (NH_4)_2SO_4的浓度对Halomonas sp.W03胞外多糖合成量的影响 | 第51-52页 |
| 4.4 初始pH对Halomonas sp.W03胞外多糖合成量的影响 | 第52-53页 |
| 4.5 NaCl浓度对Halomonas sp.W03胞外多糖合成量的影响 | 第53-54页 |
| 4.6 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 Halomonas sp.W03产胞外多糖的絮凝特性研究 | 第55-61页 |
| 5.1 实验材料方法 | 第55页 |
| 5.2 纯化多糖投加量对絮凝活性的影响 | 第55-56页 |
| 5.3 温度对絮凝活性的影响 | 第56-57页 |
| 5.4 絮凝体系pH对絮凝活性的影响 | 第57-58页 |
| 5.5 NaCl浓度对絮凝活性的影响 | 第58-59页 |
| 5.6 沉降时间对絮凝活性的影响 | 第59-60页 |
| 5.7 本章小结 | 第60-61页 |
| 第6章 Ectoine对多糖的协同絮凝性研究 | 第61-67页 |
| 6.1 实验材料与方法 | 第61页 |
| 6.2 Ectoine的添加量对絮凝活性的影响 | 第61-62页 |
| 6.3 温度对ectoine协同絮凝性的影响 | 第62-63页 |
| 6.4 pH对ectoine的协同絮凝性的影响 | 第63-64页 |
| 6.5 NaCl浓度对ectoine的协同絮凝性的影响 | 第64-65页 |
| 6.6 本章小结 | 第65-67页 |
| 第7章 Halomonas sp.W03发酵液对废水的净化处理 | 第67-71页 |
| 7.1 实验材料与方法 | 第67页 |
| 7.2 胞外多糖和ectoine共合成发酵液处理垃圾渗滤液 | 第67-69页 |
| 7.2.1 发酵液处理垃圾渗滤液添加量的优化 | 第67-68页 |
| 7.2.2 发酵液处理垃圾渗滤液时间的优化 | 第68-69页 |
| 7.2.3 发酵液处理垃圾渗滤液固形物含量、浊度、色度 | 第69页 |
| 7.3 胞外多糖和ectoine共合成发酵液对烟气脱硫废液的处理 | 第69-70页 |
| 7.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 攻读学位期间公开发表论文 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 作者简介 | 第82页 |
