缩写符号 | 第8-13页 |
摘要 | 第13-16页 |
Abstract | 第16-19页 |
第一章 文献综述 | 第20-46页 |
1 茶多酚生理功能及其体内代谢研究进展 | 第20-25页 |
1.1 茶叶中主要多酚类物质 | 第20-21页 |
1.2 茶叶儿茶素抗癌活性及其作用机理 | 第21-22页 |
1.3 茶叶儿茶素抗癌活性的流行病学研究 | 第22-23页 |
1.4 儿茶素在人体肠道内的代谢与吸收 | 第23-25页 |
1.4.1 儿茶素的小肠代谢与吸收 | 第23-24页 |
1.4.2 儿茶素的大肠菌群发酵代谢与吸收 | 第24-25页 |
2 纳米化学预防 | 第25-28页 |
2.1 纳米化学预防 | 第26页 |
2.2 纳米化学预防对癌细胞分裂和凋亡的影响 | 第26-27页 |
2.3 纳米化学预防对血管生成的抑制作用 | 第27页 |
2.4 纳米化学预防的体内活性 | 第27-28页 |
3 食品纳米技术 | 第28-34页 |
3.1 食品功能因子输送载体基本作用原理 | 第28-29页 |
3.2 微胶团(micelles) | 第29-30页 |
3.3 纳米乳液 | 第30-31页 |
3.4 生物高分子纳米颗粒 | 第31-34页 |
3.4.1 食品来源蛋白质纳米材料 | 第32-33页 |
3.4.2 食品来源多肽纳米管 | 第33页 |
3.4.3 多糖纳米材料 | 第33-34页 |
4 CS及其纳米颗粒促进药物肠道吸收作用的研究进展 | 第34-37页 |
4.1 CS作为肠道促吸收助剂 | 第34-35页 |
4.2 CS纳米颗粒用作口服药物输送载体促进肠道吸收 | 第35-37页 |
4.3 CS纳米颗粒促进药物肠道吸收的机理 | 第37页 |
5 本文的研究目的与主要研究内容 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-46页 |
第二章 茶叶中主要活性成分的HPLC快速分析方法研究 | 第46-64页 |
1 材料与方法 | 第47-49页 |
1.1 材料 | 第47-48页 |
1.1.1 样品与试剂 | 第47页 |
1.1.2 主要仪器 | 第47-48页 |
1.2 实验方法 | 第48-49页 |
1.2.1 茶多酚的提取 | 第48页 |
1.2.2 儿茶素的分离纯化及结构鉴定 | 第48页 |
1.2.3 儿茶素异构体的制备与分离纯化 | 第48-49页 |
1.2.4 HPLC法测定儿茶素的含量 | 第49页 |
2 结果 | 第49-56页 |
2.1 ECG3’Me,EGCG3”Me,C,GC,CG和GCG的分离纯化与结构鉴定 | 第49-52页 |
2.2 HPLC法测定茶叶中主要物质 | 第52-56页 |
2.3 HPLC方法的表征 | 第56页 |
3 讨论 | 第56-60页 |
4 本章小结 | 第60页 |
参考文献 | 第60-64页 |
第三章 CS-TPP纳米颗粒制备及其在儿茶素控制释放中的应用研究 | 第64-86页 |
1 材料与方法 | 第65-67页 |
1.1 材料 | 第65-66页 |
1.1.1 样品与试剂 | 第65页 |
1.1.2 主要仪器 | 第65-66页 |
1.2 方法 | 第66-67页 |
1.2.1 儿茶素—CS复合溶液的制备 | 第66页 |
1.2.2 CS-TPP纳米颗粒的制备 | 第66页 |
1.2.3 CS-TPP纳米颗粒物理化学性质的表征 | 第66页 |
1.2.4 CS-TPP纳米颗粒表面形态观测 | 第66页 |
1.2.5 儿茶素HPLC测定方法 | 第66页 |
1.2.6 测定CS-TPP纳米颗粒对儿茶素的包封率 | 第66-67页 |
1.2.7 儿茶素体外释放情况 | 第67页 |
1.2.8 统计分析 | 第67页 |
2 结果 | 第67-80页 |
2.1 CS-TPP纳米颗粒的制备 | 第67-73页 |
2.1.1 CS分子量的影响 | 第68-69页 |
2.1.2 CS浓度的影响 | 第69-70页 |
2.1.3 CS-TPP质量比的影响 | 第70页 |
2.1.4 CS溶液的初始pH值的影响 | 第70-73页 |
2.2 CS-TPP纳米颗粒的表征 | 第73-74页 |
2.3 儿茶素的包封率和释放性能研究 | 第74-79页 |
2.3.1 CS与儿茶素之间相互作用时间的影响 | 第74页 |
2.3.2 CS分子量的影响 | 第74页 |
2.3.3 CS浓度的影响 | 第74页 |
2.3.4 CS-TPP的质量比的影响 | 第74-75页 |
2.3.5 CS溶液初始pH值的影响 | 第75-76页 |
2.3.6 儿茶素含量的影响 | 第76-79页 |
2.4 红外光谱 | 第79-80页 |
3 讨论 | 第80-83页 |
3.1 不同制备条件对CS-TPP纳米颗粒物理化学性质的影响 | 第80-82页 |
3.2 制备条件对儿茶素包封率以及体外释放性能的影响 | 第82-83页 |
4 本章小结 | 第83页 |
参考文献 | 第83-86页 |
第四章 CS与CPP纳米颗粒自组装形成机制的研究 | 第86-108页 |
1 材料与方法 | 第87-90页 |
1.1 材料 | 第87-88页 |
1.1.1 样品与试剂 | 第87页 |
1.1.2 主要仪器 | 第87-88页 |
1.2 方法 | 第88-90页 |
1.2.1 水解制备CPP | 第88页 |
1.2.2 液相与质谱联用鉴定CPP化学结构 | 第88-89页 |
1.2.3 浊度滴定 | 第89页 |
1.2.4 配制CS,CPP母液 | 第89页 |
1.2.5 制备CS-CPP纳米颗粒 | 第89页 |
1.2.6 动态光散射测定CS-CPP纳米颗粒粒径 | 第89页 |
1.2.7 表面电势测定 | 第89-90页 |
1.2.8 透射电镜观察CS-CPP纳米颗粒表面形态 | 第90页 |
1.2.9 荧光光谱 | 第90页 |
2 结果 | 第90-99页 |
2.1 制备CPP | 第90页 |
2.2 多肽的化学结构鉴定 | 第90-92页 |
2.3 CS与CPP混合物浊度的滴定 | 第92-94页 |
2.4. CS-CPP纳米颗粒粒径与表面电位的变化 | 第94-97页 |
2.5 CS-CPP纳米颗粒表面形态 | 第97页 |
2.6 荧光光谱法测定的吸附动力学 | 第97-99页 |
3 讨论 | 第99-103页 |
4 本章小结 | 第103页 |
参考文献 | 第103-108页 |
第五章 CS-CPP纳米颗粒包封EGCG的研究 | 第108-124页 |
1 材料与方法 | 第109-111页 |
1.1 材料 | 第109-110页 |
1.1.1 样品与试剂 | 第109页 |
1.1.2 主要仪器 | 第109-110页 |
1.2 方法 | 第110-111页 |
1.2.1 制备CS-CPP纳米粒子的一般程序 | 第110页 |
1.2.2 CS-CPP纳米颗粒的结构表征 | 第110页 |
1.2.3 QCMD测定EGCG和CPP之间的绑定 | 第110-111页 |
1.2.4 测定CS-CPP纳米颗粒中EGCG的包封率 | 第111页 |
1.2.5 EGCG体外释放情况 | 第111页 |
2 结果 | 第111-120页 |
2.1 CS-CPP纳米颗粒以及CS、CPP和EGCG之间相互作用的表征 | 第111-116页 |
2.2 不同制备条件对CS-CPP纳米颗粒物理化学性质的影响 | 第116-119页 |
2.3 CS-CPP纳米颗粒中EGCG的包封率与EGCG体外释放性能 | 第119-120页 |
3 讨论 | 第120页 |
4 本章小结 | 第120-121页 |
参考文献 | 第121-124页 |
第六章 包封EGCG的纳米颗粒的生物学性能研究 | 第124-146页 |
1 材料与方法 | 第125-129页 |
1.1 材料 | 第125-126页 |
1.1.1 样品与试剂 | 第125-126页 |
1.1.2 主要仪器 | 第126页 |
1.2 方法 | 第126-129页 |
1.2.1 CS-CPP或CS-TPP纳米粒子的细胞毒性测定 | 第126-127页 |
1.2.2 纳米颗粒细胞吸收实验 | 第127页 |
1.2.3 包封有EGCG的CS-CPP纳米颗粒的细胞抗氧化活性测定 | 第127-128页 |
1.2.4 EGCG跨Caco-2细胞单层细胞膜的运输 | 第128-129页 |
1.2.5 统计分析 | 第129页 |
2 结果 | 第129-137页 |
2.1 纳米颗粒的细胞毒性 | 第129-131页 |
2.2 细胞对纳米颗粒的吸收 | 第131-133页 |
2.3 包封有EGCG的CS-CPP纳米颗粒的细胞抗氧化活性 | 第133-135页 |
2.4 Caco-2单层细胞膜渗透性实验预测纳米包封后的EGCG的肠道渗透与吸收性质. | 第135-137页 |
3 讨论 | 第137-141页 |
4 本章小结 | 第141页 |
参考文献 | 第141-146页 |
全文结论 | 第146-148页 |
主要创新点 | 第148-150页 |
致谢 | 第150-152页 |
攻读学位期间发表论文与申请专利 | 第152-153页 |