| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 手性芳香胺类化合物拆分的研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.1 手性芳香胺化合物的研究概述 | 第11页 |
| 1.1.2 手性芳香胺类化合物的拆分方法 | 第11-13页 |
| 1.1.2.1 诱导结晶拆分法 | 第12页 |
| 1.1.2.2 化学拆分法 | 第12页 |
| 1.1.2.3 不对称合成法 | 第12-13页 |
| 1.1.2.4 生物法 | 第13页 |
| 1.2 脂肪酶在手性芳香胺类化合物合成中的应用 | 第13-16页 |
| 1.2.1 不同来源的脂肪酶 | 第13-14页 |
| 1.2.2 反应体系 | 第14-15页 |
| 1.2.3 其他催化方法 | 第15-16页 |
| 1.3 酰胺酶在手性芳香胺制备中的应用 | 第16-18页 |
| 1.3.1 酰胺水解酶 | 第16-17页 |
| 1.3.2 青霉素酰化酶 | 第17-18页 |
| 1.4 本课题的研究内容和意义 | 第18-19页 |
| 1.4.1 本课题的研究背景及选题意义 | 第18页 |
| 1.4.2 本课题的主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 产立体选择性脂肪酶菌株的筛选及初步鉴定 | 第19-31页 |
| 2.1 前言 | 第19页 |
| 2.2 材料与方法 | 第19-25页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.2.1.1 实验菌株 | 第19页 |
| 2.2.1.2 培养基成分 | 第19-20页 |
| 2.2.1.3 主要原料与试剂 | 第20页 |
| 2.2.1.4 主要溶液 | 第20-21页 |
| 2.2.1.5 主要实验仪器 | 第21页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 2.2.2.1菌株旳蹄选方法 | 第21-22页 |
| 2.2.2.2 1-苯乙胺的检测方法气相色谱检测法 | 第22页 |
| 2.2.2.3 数据处理方法 | 第22页 |
| 2.2.2.4 脂肪酶活力测定 | 第22-24页 |
| 2.2.2.5 菌种的初步鉴定 | 第24页 |
| 2.2.2.6 酶反应最适pH值和最适温度的确定 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-29页 |
| 2.3.1 产脂肪酶菌种的平板初蹄 | 第25页 |
| 2.3.2 1-苯乙胺的标准曲线的建立 | 第25-26页 |
| 2.3.3 产立体选择性脂肪酶菌株的筛选结果 | 第26-27页 |
| 2.3.4 菌种的初步鉴定 | 第27-28页 |
| 2.3.4.1 形态观察 | 第27页 |
| 2.3.4.2 生理生化特征测定 | 第27-28页 |
| 2.3.5 酶最适pH值和最适温度的确定 | 第28-29页 |
| 2.3.5.1 酶反应最适pH值测定 | 第28-29页 |
| 2.3.5.2 酶反应最适温度测定 | 第29页 |
| 2.4 小结 | 第29-31页 |
| 第三章 菌株J03产脂肪酶条件优化 | 第31-39页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 材料和方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.2.1.1 实验菌种 | 第31页 |
| 3.2.1.2 培养基成分 | 第31-32页 |
| 3.2.1.3 主要试剂 | 第32页 |
| 3.2.1.4 主要实验仪器 | 第32页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.2.1 发酵产酶实验 | 第32页 |
| 3.2.2.2 生物量的测定方法 | 第32页 |
| 3.2.2.3 脂肪酶活力测定 | 第32-33页 |
| 3.2.2.4 培养基组分优化 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-38页 |
| 3.3.1 培养基组分优化 | 第33-37页 |
| 3.3.1.1 碳源 | 第33-35页 |
| 3.3.1.2 氮源 | 第35页 |
| 3.3.1.3 诱导剂 | 第35-37页 |
| 3.3.2 发酵产酶时间曲线 | 第37-38页 |
| 3.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 第四章 静息细胞拆分外消旋的1-苯基乙胺 | 第39-45页 |
| 4.1 前言 | 第39页 |
| 4.2 材料和方法 | 第39-41页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 4.2.1.1 实验菌株 | 第39页 |
| 4.2.1.2 培养基成分 | 第39-40页 |
| 4.2.1.3 主要原料与试剂 | 第40页 |
| 4.2.1.4 主要实验仪器 | 第40页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.2.1 JO3静息细胞的制备 | 第40页 |
| 4.2.2.2 静息细胞催化拆分1-苯乙胺外消旋体的基本工艺 | 第40-41页 |
| 4.2.2.3 数据处理方法 | 第41页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 4.3.1 不同有机溶剂对催化反应的影响 | 第41-42页 |
| 4.3.2 酰化剂对酶催化的影响 | 第42页 |
| 4.3.3 底物浓度对酶催化反应的影响 | 第42-43页 |
| 4.3.4 底物与酰化剂的比例对酶催化的影响 | 第43-44页 |
| 4.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第五章 酰胺酶产生菌的筛选及利用响应面法优化其产酶条件 | 第45-56页 |
| 5.1 前言 | 第45页 |
| 5.2 材料与方法 | 第45-49页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 5.2.1.1 实验菌株 | 第45页 |
| 5.2.1.2 培养基成分 | 第45-46页 |
| 5.2.1.3 主要试剂 | 第46页 |
| 5.2.1.4 主要实验仪器 | 第46页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 5.2.2.1 底物2-氯-N-(1-(4-氯苯基)乙基）乙酰胺的制备 | 第46-47页 |
| 5.2.2.2 菌种的蹄选 | 第47页 |
| 5.2.2.3 底物2-氯-N-(1-(4-氯苯基)乙基)乙醜胺和产物4-氣苯乙胺的HPLC法分析 | 第47-48页 |
| 5.2.2.4 数据处理 | 第48页 |
| 5.2.2.5 酶活的测定方法 | 第48-49页 |
| 5.2.2.6 Plackett-Burman实验 | 第49页 |
| 5.2.2.7 响应面实验 | 第49页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第49-55页 |
| 5.3.1 底物2-氯-N-(1-(4-氯苯基)乙基)乙酰胺标准曲线的建立 | 第49-50页 |
| 5.3.2 产物4-对氯苯乙胺标准曲线的建立 | 第50-51页 |
| 5.3.3 产立体选择性酰胺酶菌株的筛选结果 | 第51页 |
| 5.3.4 响应面法优化产酶条件 | 第51-55页 |
| 5.3.4.1 PI acket-Burman实验 | 第51-53页 |
| 5.3.4.2 响应面实验 | 第53-55页 |
| 5.4 小结 | 第55-56页 |
| 第六章 黑曲霉M041水解2-氯-N-(1-(4-氯苯基)乙基)乙酰胺制备4-氯苯乙胺工艺的研究 | 第56-62页 |
| 6.1 前言 | 第56页 |
| 6.2 材料与方法 | 第56-58页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第56-57页 |
| 6.2.1.1 实验菌株 | 第56页 |
| 6.2.1.2 培养基成分 | 第56-57页 |
| 6.2.1.3 主要试剂 | 第57页 |
| 6.2.1.4 主要实验仪器 | 第57页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第57-58页 |
| 6.2.2.1 静息细胞制备 | 第57页 |
| 6.2.2.2 转化反应 | 第57-58页 |
| 6.2.2.3 数据处理 | 第58页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第58-61页 |
| 6.3.1 反应介质的确定 | 第58-59页 |
| 6.3.2 有机试剂的影响 | 第59页 |
| 6.3.3 底物浓度的影响 | 第59-60页 |
| 6.3.4 体系水含量的影响 | 第60-61页 |
| 6.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第七章 总结与展望 | 第62-64页 |
| 7.1 总结 | 第62-63页 |
| 7.2 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第71页 |
