| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 课题研究的背景和意义 | 第12-13页 |
| 1.2 黑木耳多糖国内外研究现状 | 第13-17页 |
| 1.2.1 黑木耳多糖概况 | 第13页 |
| 1.2.2 黑木耳多糖结构特征 | 第13-14页 |
| 1.2.3 黑木耳多糖生理活性 | 第14-16页 |
| 1.2.4 多糖降解方法 | 第16-17页 |
| 1.3 生物转化国内外研究现状 | 第17-19页 |
| 1.3.1 生物转化概念 | 第17-18页 |
| 1.3.2 生物转化分类 | 第18页 |
| 1.3.3 生物转化的特点 | 第18-19页 |
| 1.3.4 多糖的生物转化 | 第19页 |
| 1.4 糖尿病及其治疗国内外研究现状 | 第19-20页 |
| 1.4.1 糖尿病概况 | 第19页 |
| 1.4.2 糖尿病发病机制 | 第19-20页 |
| 1.4.3 多糖在糖尿病治疗的作用 | 第20页 |
| 1.5 课题研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-39页 |
| 2.1 材料及仪器 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验菌株 | 第22页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.4 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.5 实验器材 | 第23-24页 |
| 2.2 生物转化工艺优化的方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 标准曲线的制备 | 第24-26页 |
| 2.2.2 黑木耳多糖衍生物的提取 | 第26页 |
| 2.2.3 生物转化培养基的配制 | 第26页 |
| 2.2.4 生物转化率的测定方法 | 第26-27页 |
| 2.2.5 筛选转化菌株 | 第27页 |
| 2.2.6 生物转化单因素实验条件的确定 | 第27页 |
| 2.2.7 响应面法优化生物转化制备黑木耳多糖衍生物的工艺条件 | 第27-28页 |
| 2.3 膜分离技术的试验方法 | 第28-29页 |
| 2.3.1 超滤膜分离技术的试验方法 | 第28-29页 |
| 2.3.2 纳滤膜分离技术的试验方法 | 第29页 |
| 2.4 黑木耳多糖衍生物体外生理活性的筛选 | 第29-32页 |
| 2.4.1 体外抑制 α-淀粉酶酶活性的测定方法 | 第29-30页 |
| 2.4.2 体外结合胆酸盐能力的测定方法 | 第30-31页 |
| 2.4.3 总还原能力的测定方法 | 第31页 |
| 2.4.4 羟自由基清除能力的测定方法 | 第31页 |
| 2.4.5 ABTS·~+自由基清除能力的测定方法 | 第31-32页 |
| 2.5 黑木耳多糖衍生物的结构分析 | 第32-33页 |
| 2.5.1 红外光谱法分析 | 第32页 |
| 2.5.2 单糖组成分析 | 第32-33页 |
| 2.6 动物试验方法 | 第33-38页 |
| 2.6.1 链脲佐菌素型糖尿病小鼠模型的制备方法与分组 | 第33页 |
| 2.6.2 糖尿病小鼠体重、进食量和饮水量的测定 | 第33-34页 |
| 2.6.3 糖尿病小鼠糖耐量的测定 | 第34页 |
| 2.6.4 糖尿病小鼠空腹血糖值的测定 | 第34页 |
| 2.6.5 糖尿病小鼠脏器指数的测定 | 第34页 |
| 2.6.6 糖尿病小鼠抗氧化功能的测定 | 第34-36页 |
| 2.6.7 糖尿病小鼠血脂的测定 | 第36-37页 |
| 2.6.8 糖尿病小鼠胰岛素、胰高血糖素的测定 | 第37-38页 |
| 2.7 数据的处理与统计 | 第38-39页 |
| 第3章 绿色木霉生物转化黑木耳多糖工艺优化 | 第39-51页 |
| 3.1 生物转化菌株的筛选 | 第39-40页 |
| 3.2 绿色木霉生物转化黑木耳多糖单因素研究 | 第40-45页 |
| 3.2.1 含水量对转化率的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.2 接种量对转化率的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.3 温度对转化率的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.4 时间对转化率的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 响应面分析法优化绿色木霉生物转化黑木耳多糖工艺条件 | 第45-50页 |
| 3.4 验证实验 | 第50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第4章 体外生理功能分析与结构解析 | 第51-62页 |
| 4.1 体外抑制 α-淀粉酶活性分析 | 第51-53页 |
| 4.2 体外结合胆酸盐能力分析 | 第53-54页 |
| 4.3 体外抗氧化活性分析 | 第54-57页 |
| 4.3.1 总还原能力分析 | 第54-55页 |
| 4.3.2 羟自由基清除能力的研究 | 第55-56页 |
| 4.3.3 ABTS·~+自由基清除能力的研究 | 第56-57页 |
| 4.4 AAPD-6 结构解析 | 第57-60页 |
| 4.4.1 AAPD-6 红外光谱分析 | 第57-59页 |
| 4.4.2 AAPD-6 单糖组成分析 | 第59-60页 |
| 4.5 本章小节 | 第60-62页 |
| 第5章 AAPD-6 对糖尿病小鼠生理功能的影响 | 第62-80页 |
| 5.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠体重、进食量和饮水量的影响 | 第62-65页 |
| 5.1.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠体重的影响 | 第62-63页 |
| 5.1.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠进食量的影响 | 第63-64页 |
| 5.1.3 AAPD-6 对糖尿病小鼠饮水量的影响 | 第64-65页 |
| 5.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第65-66页 |
| 5.3 AAPD-6 对糖尿病小鼠糖耐量的影响 | 第66-68页 |
| 5.3.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠糖耐量的影响 | 第66-67页 |
| 5.3.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠曲线下面积的分析 | 第67-68页 |
| 5.4 AAPD-6 对糖尿病小鼠空腹血糖值的影响 | 第68-69页 |
| 5.5 AAPD-6 对糖尿病小鼠抗氧化功能的影响 | 第69-72页 |
| 5.5.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠GSH-PX活性的影响 | 第69-70页 |
| 5.5.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠总SOD活性的影响 | 第70-71页 |
| 5.5.3 AAPD-6 对糖尿病小鼠MDA含量的影响 | 第71-72页 |
| 5.6 AAPD-6 对糖尿病小鼠血脂的影响 | 第72-77页 |
| 5.6.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清LDL-C的影响 | 第73页 |
| 5.6.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清HDL-C的影响 | 第73-74页 |
| 5.6.3 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清TC的影响 | 第74-75页 |
| 5.6.4 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清TG的影响 | 第75-77页 |
| 5.7 AAPD-6 对糖尿病小鼠胰岛分泌的影响 | 第77-79页 |
| 5.7.1 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清胰岛素的影响 | 第77-78页 |
| 5.7.2 AAPD-6 对糖尿病小鼠血清胰高血糖素的影响 | 第78-79页 |
| 5.8 本章小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第91-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
