| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第13-20页 |
| 1.1 药物性肝损伤 | 第13-15页 |
| 1.1.1 醋氨酚诱导肝损伤机制 | 第13-14页 |
| 1.1.2 醋氨酚肝损伤相关因素 | 第14-15页 |
| 1.2 肝损伤指标 | 第15-16页 |
| 1.2.1 转氨酶 | 第15页 |
| 1.2.2 丙二醛 | 第15页 |
| 1.2.3 超氧化物歧化酶 | 第15-16页 |
| 1.2.4 还原型谷胱甘肽 | 第16页 |
| 1.2.5 谷胱甘肽过氧化物酶 | 第16页 |
| 1.3 谷胱甘肽S转移酶A1相关研究 | 第16-17页 |
| 1.3.1 谷胱甘肽S转移酶概况 | 第16-17页 |
| 1.3.2 谷胱甘肽S转移酶A1概况 | 第17页 |
| 1.4 肝细胞核因子-1 相关研究 | 第17-19页 |
| 1.4.1 肝细胞核因子概况 | 第17页 |
| 1.4.2 肝细胞核因子-1 概况 | 第17-18页 |
| 1.4.3 肝细胞核因子-1 结构与功能 | 第18页 |
| 1.4.4 C2-神经酰胺概况 | 第18-19页 |
| 1.4.5 奥替普拉概况 | 第19页 |
| 1.5 本研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1 材料 | 第20-24页 |
| 2.1.1 试验细胞 | 第20页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.4 溶液配制 | 第21-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-33页 |
| 2.2.1 Hep G2细胞的培养 | 第24页 |
| 2.2.2 醋氨酚诱导肝细胞损伤模型的复制 | 第24-27页 |
| 2.2.3 C2-神经酰胺与奥替普拉的作用试验 | 第27-28页 |
| 2.2.4 肝细胞损伤中HNF-1 对GSTA1表达的调节作用 | 第28-32页 |
| 2.2.5 数据处理与统计分析 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-46页 |
| 3.1 醋氨酚诱导肝细胞损伤模型的复制 | 第33-36页 |
| 3.1.1 培养上清转氨酶活性 | 第33-34页 |
| 3.1.2 肝细胞各指标 | 第34页 |
| 3.1.3 肝细胞损伤模型的复制 | 第34-36页 |
| 3.2 C2-神经酰胺和奥替普拉的作用试验 | 第36-38页 |
| 3.2.1 C2-神经酰胺和奥替普拉的最适作用浓度筛选 | 第36-37页 |
| 3.2.2 C2-神经酰胺和奥替普拉对正常肝细胞的作用 | 第37-38页 |
| 3.3 C2-神经酰胺和奥替普拉对肝细胞功能的影响 | 第38-41页 |
| 3.3.1 培养上清转氨酶活性 | 第38页 |
| 3.3.2 肝细胞各指标 | 第38-41页 |
| 3.4 肝细胞损伤模型中HNF-1 对GSTA1表达的调节作用 | 第41-46页 |
| 3.4.1 HNF-1 对GSTA1 m RNA表达的调节 | 第41-43页 |
| 3.4.2 HNF-1 对GSTA1蛋白表达的调节 | 第43-45页 |
| 3.4.3 培养上清液中GSTA1含量的测定 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-50页 |
| 4.1 醋氨酚诱导肝细胞损伤模型的复制 | 第46-47页 |
| 4.2 C2-神经酰胺与奥替普拉的作用试验 | 第47页 |
| 4.3 C2-神经酰胺与奥替普拉对肝细胞功能的影响 | 第47页 |
| 4.4 HNF-1 对GSTA1表达的调节作用 | 第47-50页 |
| 4.4.1 HNF-1 的表达水平分析 | 第47-48页 |
| 4.4.2 GSTA1的表达水平分析 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59页 |
