| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩写词表 | 第9-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-24页 |
| 1.1 植物的铝毒害 | 第13-15页 |
| 1.2 植物的耐铝机制 | 第15-20页 |
| 1.2.1 外部排斥机制 | 第15-18页 |
| 1.2.2 内部忍耐机制 | 第18-20页 |
| 1.3 STOP1与ART1研究进展 | 第20-23页 |
| 1.3.1 STOP1研究进展 | 第20-22页 |
| 1.3.2 ART1研究进展 | 第22-23页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第23-24页 |
| 第2章 甜高粱SbSTOP1生物信息学与表达模式分析 | 第24-37页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第24-29页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第25页 |
| 2.1.4 SbSTOP1的生物信息学分析 | 第25页 |
| 2.1.5 甜高粱培养 | 第25页 |
| 2.1.6 试验处理与方法 | 第25-26页 |
| 2.1.7 植物总RNA提取 | 第26页 |
| 2.1.8 cDNA第一链合成 | 第26-27页 |
| 2.1.9 实时荧光定量PCR（qPCR） | 第27-28页 |
| 2.1.10 实时荧光定量PCR引物 | 第28-29页 |
| 2.2 结果与分析 | 第29-35页 |
| 2.2.1 生物信息学分析 | 第29-31页 |
| 2.2.2 表达模式分析 | 第31-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-36页 |
| 2.4 小结 | 第36-37页 |
| 第3章 SbSTOP1的亚细胞定位与转录活性分析 | 第37-50页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第37-46页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第37页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第38-39页 |
| 3.1.4 拟南芥培养 | 第39-40页 |
| 3.1.5 RNA提取与cDNA第一链合成 | 第40页 |
| 3.1.6 基因克隆及载体构建 | 第40-43页 |
| 3.1.7 原生质体转化 | 第43-44页 |
| 3.1.8 酵母转化 | 第44-46页 |
| 3.2 结果与分析 | 第46-48页 |
| 3.2.1 亚细胞定位 | 第46-47页 |
| 3.2.2 转录自激活 | 第47-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 第4章 SbSTOP1d的转录调控和互作蛋白分析 | 第50-66页 |
| 4.1 试验材料与方法 | 第50-57页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第50-51页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.3 载体构建 | 第52-54页 |
| 4.1.4 转录调控分析 | 第54-55页 |
| 4.1.5 互作蛋白筛选 | 第55-56页 |
| 4.1.6 蛋白互作验证 | 第56-57页 |
| 4.2 结果与分析 | 第57-63页 |
| 4.2.1 转录调控分析 | 第57-58页 |
| 4.2.2 酵母文库筛选 | 第58-59页 |
| 4.2.3 CPRG液体显色 | 第59-60页 |
| 4.2.4 酵母双杂交缺素培养分析 | 第60-61页 |
| 4.2.5 双分子荧光互补互作验证 | 第61-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-65页 |
| 4.4 小结 | 第65-66页 |
| 第5章 SbSTOP1d异源表达Atstop1的表型分析 | 第66-72页 |
| 5.1 试验材料与方法 | 第66-68页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第66页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第66页 |
| 5.1.3 载体构建 | 第66-67页 |
| 5.1.4 农杆菌介导蘸花侵染拟南芥 | 第67页 |
| 5.1.5 转基因材料筛选 | 第67-68页 |
| 5.1.6 Al胁迫下的表型分析 | 第68页 |
| 5.2 试验结果与分析 | 第68-70页 |
| 5.2.1 转基因材料检测 | 第68-69页 |
| 5.2.2 Al胁迫下的表型分析 | 第69-70页 |
| 5.3 讨论 | 第70-71页 |
| 5.4 小结 | 第71-72页 |
| 第6章 结果与展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-85页 |
| 作者简介 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |